IX Международная студенческая научная конференция Студенческий научный форум - 2017

В настоящей дипломной работе применяют следующие термины с соответствующими определениями

Антигельминтики(анти- + греч. helmins — червь) — вещества, убивающие или изгоняющие гельминтов из организма.

Биогельминты - группа паразитических червей, которые во взрослом состоянии паразитируют в т. н. дефинитивном (окончательном) хозяине (человек, животное), а на стадии личинки — в промежуточном хозяине (разные животные), в отличие от геогельминтов, развивающихся без промежуточного хозяина.

Ветеринарные мероприятия - комплекс противоэпизоотических, ветеринарно-санитарных процедур, направленных на предотвращение возникновения, распространения или ликвидацию болезней животных, включая их профилактику, лечение или диагностику; обезвреживание (обеззараживание), изъятие и уничтожение животных, зараженных особо опасными болезнями; обеспечение безопасности продуктов и сырья животного происхождения, включая процедуры идентификации, в целях защиты здоровья животных и человека от заразных болезней.

Гельминтозы (от греч. helmins, родительный падеж helminthos паразитный червь, глист + -osis) — паразитарные болезни человека, животных и растений, вызываемых гельминтами — паразитическими червями.

Печёночная двуустка, или обыкновенная фасциола (латин. Fasciola hepatica) — вид плоских червей из класса трематод (Trematoda). Паразиты со сложным жизненным циклом, включающим партеногенетические и гермафродитное поколения. В качестве хозяина для партеногенетических поколений печёночной двуустки обычно выступают малые прудовики (Galba truncatula). Гермафродитное поколение (мариты) обитает в печени, жёлчном пузыре и его протоке у млекопитающих, как правило, домашних копытных (коров и овец), иногда происходит заражение человека.

Трематодозы (Trematodoses) — болезни человека и животных, вызываемые трематодами. Все трематодозы — биогельминты. Первым промежуточным хозяином паразита всегда является моллюск.

Фасциолёз (Fasciolosis) — гельминтозное, из группы трематодозов, заболевание животных и человека, характеризуется поражением печени и желчевыделительной системы.

Экономическая эффективность ветеринарных мероприятий – размеры предотвращенного ветеринарной службой ущерба в животноводстве, выраженные количеством предохраненных от болезней животных и объемом полученной от них продукции, оцененной в действующих закупочных ценах.

ОБОЗНАЧЕНИЯ И СОКРАЩЕНИЯ

В настоящей дипломной работе применяют следующиеобозначения и сокращения:

г. – город

г., гг. – год, годы

Зв - ветеринарные затраты

ИИ – интенсивность инвазии

ИЭ - интенсэффективность

К_з - коэффициент заболеваемости

К_у – коэффициент ущерба

мкг – микрограмм

мл – миллилитр

нм – нанаметр (единица измерения)

П_у – предотвращённый ущерб

п.з. – поле зрения (микроскопа)

рН – показатель концентрации водородных ионов

РК – Республика Казахстан

РА – реакция агглютинации

РИФ – реакция иммунофлюресценции

РНГА – реакция непрямой гемагглютинации

РСК – реакция связывания комплемента

РДСК – реакция длительного связывания комплемента

РПГА – реакция пассивной гемагглютинации

т.к. – так как

т.е. – то есть

У - экономический ущерб

ТОО – товарищество с ограниченной ответственностью

Э_ф – экономический эффект

ЭИ – экстенсивность инвазии

ЭЭ - экстенсэффективность

1 ВВЕДЕНИЕ

1.  

   1. Актуальность и практическая значимость работы

Развитие Республики Казахстан в соответствии с Государственной Продовольственной Программой и Стратегией индустриально-инновационного развития РК диктует необходимость дальнейшего развития агропромышленного комплекса страны в соответствии с принципами свободной рыночной экономики.

В соответствии с основными направлениями, намеченными Программой Президента Республики Казахстан, од­ной из главных и неотложных задач является мощный подъем сельского хозяйства, что позволит в самый короткий срок полностью удовлетворить растущие потребности страны в сельскохозяйственных продуктах и обеспе­чить дальнейшее повышение жизненного уровня трудящихся.

Ликвидация гельминтозных заболеваний является важной проблемой в животноводстве, которая должна стоять в центре внимания, так как гельминтозы до сих пор еще широко распространены по всей стране и наносят большой экономический ущерб хозяйствам и фермам.

В настоящее время фасциолез, вызываемый Fasciola hepatica (Linne, 1758), широкое распространен среди крупного рогатого скота на всей территории Республики Казахстан и в Алматинской области, в частности в хозяйстве «Байсерке-Агро». В нашей стране и за рубежом накоплен огромный фактический материал, связанный с этим гельминтозом, разработан ряд мероприятий по борьбе с ним. Однако, потери в животноводстве от фасциолеза продолжают оставаться высокими [1, 2, 3, 4].

Потеря молочной продуктивности при фасциолезе может достигать 25%, а массы тела - 10% [5].

Основным звеном в цепи оздоровительных мероприятий против фасциолеза можно считать дегельминтизацию. Но успешное лечение животных от этого гельминта, в первую очередь, зависит от своевременного применения фасциолоцидных препаратов, что обеспечивает высокую эффективность дегельминтизации. Для этого нужно в каждом конкретном регионе, в том числе в Алматинской области, пересмотреть процесс развития и созревания фасциол, краевую эпизоотологию фасциолеза, на базе чего и строить схему лечебно-профилактических дегельминтизаций.

Ветеринарный надзор является важным составляющим элементом государственной программы охраны здоровья людей. Проводя постоянный контроль каждой партии (туши) мяса и мясной продукции, молока и молочной продукции, яиц, овощей и других продуктов в местах торговли и на рынках, исключая из реализации продукты сомнительного качества не безопасные для здоровья людей, предупреждение эпидемических болезней, общих для человека и животных, профилактика пищевых токсиноинфекций среди потребителей. С этой целью госветнадзор организовал и содержит на рынках лаборатории. В санэпидемстанциях работают высококвалифицированные специалисты, имеющие специальность ветеринарного врача (фельдшер) и опыт послеубойной диагностики болезней животных, по определению качества и безопасности продуктов животного происхождения.

В настоящее время ассортимент противопаразитарных препаратов, в том числе антгельминтиков, постоянно пополняется. Основным мотивом для создания новых лекарственных средств является получение препаратов, характеризующихся высокой стабильностью, широким спектром противопаразитарной активности на фоне слабовыраженных побочных явлений, экологической безопасностью и т.д. [1].

В тоже время существует актуальная проблема - недостаток антгельминтиков против фасциолеза дойных коров, поскольку очень важным требованием для таких препаратов является отсутствие влияния на качество молока, и возможность применения фасциолоцидных препаратов без ограничений.

Всесторонний анализ литературы по фасциолоцидам показал, что в нашей стране таких препаратов мало и все они либо импортного производства, либо в данный момент не производятся. В отечественной фирме ТОО «НПП «Антиген» (Алматинская область, село Абай) был разработан отечественный антигельминтик «Альбен-К», созданный с добавлением в состав альбендазола.

В связи с этим возникла необходимость всестороннего изучения данных препаратов, а также выяснения эпизоотологических особенностей фасциолеза в Алматинской области, в частности в хозяйстве «Байсерке-Агро». Данные исследования актуальны и имеют научное и практическое значение.

1.2 Оценка современного состояния решаемой проблемы

1.2.1 Эпизоотология фасциолеза крупного рогатого скота

Фасциолез - до сих пор широко распространенное заболевание сельскохозяйственных животных, особенно крупного рогатого скота. Этот гельминтоз широко распространен почти во всех странах мира [6, 7, 8].

Р.Т. Сафиуллин (1997) изучал вопросы распространения фасциолеза в нашей стране. По его данным в зонах достаточного и избыточного увлажне­ния, а также в местах, имеющих заболоченные и сырые пастбищные участки, стоячие и слабопроточные водоемы, болезнь встречают почти повсеместно. Экстснснниазпроианность животных в хозяйствах, расположенных на этих территориях, достигает 90% [9].

По данным В.В. Гришина, А.П. Сухаревой (2005) зараженность крупного рогатого скота фасциолезом на территории России колеблется от 32% - в средней полосе, до 90% - в зонах с сырыми и заболоченными пастбищами [10].

Н.П. Сорокина (2004) выявила, что пик заболеваемости фасциолезом крупного рогатого скота в целом по РФ приходился на 1992 г. Тогда количество заболевших животных составило 7,9 на 100 тысяч поголовья (в 1990 г. 3,1, в 1999г. - 2,9, в 2000 г. показатель увеличился до 3,4, а в 2001 г. снизился до 0,6) [11].

П.П. Бердников (1980) в Серышепском районе Амурской области установил, что у животных, выпасающихся на культурных пастбищах, гельминты не обнаруживаются, а у выпасающихся на естественных заболоченных паст­бищах экстенсивность фасциолезной инвазии составляет 6% [12].

А.В. Самобочий (2000) установил, что экстенсивность фасциолезной инвазии в условиях Республики Алтай (ранее Алтайский край) составляет у те­лят до года 2,2%, молодняка крупного рогатого скота в возрасте 1-2 лет 3,7%, животных 3-5 лет 13%, 6-8 лет 14,9% и коров старше 9 лет 15,2% при обнару­жении яиц фасциол в грамме фекалий, соответственно, 4,0; 9,5; 17,5; 19,6 и 25,3 экз. Отмечено, что с возрастом крупного рогатого скота повышается как экстенсивность инвазии, так и среднее количество яиц фасциол в грамме фекалий [13].

По данным B.А. Марченко, Е.А. Васильевой (2007) в Республике Алтай фасциолез зарегистрирован в 8 районах из 10, наиболее неблагополучная обстановка по фасциолезу сложилась в Турочакском и Чойском районах, инвазированность фасциолами составляет 94,1 и 83,1%, соответственно [14].

А.Г. Масарновский (1971) зафиксировал фасциолез у крупного рогатого скота в Иркутской области, интенсивность инвазии колебалась от 2 до 76%. Он проанализировал ветеринарную отчетность по Иркутской области, оказалось, что фасциолез в этой области имеется в 21 из 27 административных районов. По результатам гельминтокопрологических обследований крупного рогатого скота экстенсивность инвазии по области в среднем, равна 16,5%, по гелъминтологическим вскрытиям печени - 26,2%, с интенсивностью инвазии до 195 фасциол. Наибольшая экстенсивность инвазии жвачных зарегистрирована в Качугском (76%), Иркутском (56%), Жигаловском (52%) и Черемховском (23,6%) районах [15].

А.Х. Масарновский (1971) установил, что заражение дефинитивных хозяев фасциолами в условиях Иркутской области происходит в первый паст­бищный сезон жизни животного. Периодом наибольшего заражения является август и сентябрь. У молодняка текущего года рождения, по результатам гельминтокопрологических обследований, фасциолез впервые регистрируется в лесостепной зоне в декабре текущего года, в таежной - в январе следующего [15].

В Иркутской области для сезонной динамики фасциолеза характерно нарастание инвазии с декабря по март, а затем она сохраняется на постоянном уровне, вновь увеличиваясь с декабря. С увеличением возраста животных увеличивается экстенсивность в интенсивность инвазии. Фасциолез поражает крупный рогатый скот на первом году жизни от 4-5,5% до 48-55,5%, на втором - от 52-63,8% до 60-86,1%, на третьем - до 84-94,4%.

В Тюменской области фасциолез зарегистрирован в 65 пунктах 59 хозяйств различной формы собственности, расположенных в 13 административных районах. Ареал инвазии охватывает лесостепную, таежную и лесотундровую зоны. Его южная граница совпадает с таковой области, северная - достигает полярного круга. Наиболее высокая пораженность животных трематодами зафиксирована на уровне 40,9% [16].

М.С. Атаев (1994) установил в Республике Дагестан (ранее Дагестанской АССР), что средняя экстенсинвазированность фасциолезом составляет у крупного рогатого скота в низменной зоне 41%, в предгорной - 29,1%, в горной 10,2%.

A.M. Атаев определил, что в Республике Дагестан (ранее Дагестанской АССР) у крупного рогатого скота паразитирует фасциола обыкновенная и фасциола гигантская, причем в горной зоне абсолютно доминирует первый вид, а на участках равнинной зоны с интенсивным орошением, обводнением земель и заливаемых морем - второй. Мощные развитые очаги фасциолеза животных расположены в равнинной зоне. На отдельных территориях таких очагов зараженность животных достигает больших значений - экстенсивность инвазии 80% и более, интенсивность - 1-145 экз. В предгорной зоне фасциолез животных имеет более ограниченное распространение. Показатели зараженности животных фасциолами невысокие (экстенсивность инвазии до 8%, интенсивность - 1-20 экз. [17].

По данным Л.И. Малкандуевой (2004) в Кабардино-Балкарии и Ставропольском крае экстенсивность фасциолезной инвазии у крупного рогатого скота составляет 62,6%, при интенсивности трематод от 27,4 - 136,8 экз./гол. [18].

В этих областях у крупного рогатого скота, впервые вышедшего на пастбища, яйца фасциол в фекалиях обнаруживаются в сентябре (6-9%), в даль­нейшим в течение осенних месяцев идет нарастание экстенсивности инвазии, которая достигает максимума в декабре-январе (22-24%).

М.Г. Хукчаева, A.M. Атаев, Х.А. Ахмедрабаданов (2007) установили, что в Чеченской республике крупный рогатый скот заражен F. hepaticaна 19,2-20% с интенсивностью 9-108 экземпляров фасциол на животное [17].

С.П. Убираев (1998) установил, что уровень распространения фасциолеза среди крупного рогатого скота в Юго-Восточном регионе Российской Федерации составляет 15,96% [18].

В Центрально-Черноземных обласгях России (Белгородской, Воронежской, Курской, Липецкой, Тамбовской) фасциолез регистрируется у крупного и мелкого рогатого скота с экстенсивностью от 5 до 20% при интенсивности в несколько десятков экземпляров. Печень, пораженная фасциолами, при убое выбраковывается на мясокомбинате у 5-6% осмотренных туш.

По данным JI.H. Хицовой и И.Д. Шелякина (1996) фасциолезом в центрально-черноземных областях РФ (Воронежская, Липецкая, Курская и Бел­городская области) поражено от 20 до 100% домашних копытных животных [20].

В.А. Ромашов, И.Д. Шелякин (1996) кроме заражения домашних животных фасциолами, установили фасциолез и у диких животных в Центральном Черноземье России, в частности, авторы обнаружили фасциол у лосей, косуль, зубров и кабанов [21].

На Россошанском мясокомбинате в Воронежской области выявляют поражение печени фасциолами у 6,1% крупного рогатого скота, поступившего на убой.

С.Т. Карелин, О.М. Швец (1999) отмечают, что в зависимости от погодных условий зараженность животных фасциолезом в Курской области в разные годы колеблется в пределах 4,3-16,4% [22].

При этом серьезную роль в заражении животных весной играют перезимовавшие моллюски. Так С.С. Гурьева (2007) установила, что в природных условиях Курской области более 50% моллюсков перезимовывают, а вместе с ними и личиночные формы фасциол [23].

По данным Н.П. Сорокиной (2004) центральный регион РФ является одним из наиболее неблагополучных по фасциолезу (зараженность крупного рогатого скота фасциолезом составляет 14-19%, на остальной территории РФ -7-9%). Наибольшая зараженность крупного рогатого скота фасциолезом была выявлена на территории Ярославской, Вологодской и Брянской областей (более 10 тысяч на 100 тысяч голов). В Московской области фасцнолез распространен повсеместно, но наиболее интенсивно в хозяйствах северо-западной исеверо-восточной части области. Зараженность крупного рогатого скота фасциолезом в 1986-1988 гг. составила 10-15%, а в 2001-2003 гг. возросла до 20% [11].

По результатам копрологических исследований яйца F.hepatica в Нарофоминском районе обнаружили в 2,4% проб, в Истринском - в 6,3% проб. По результатам экспертизы печени экстенсивность инвазии фасциолами была в 2-4 раза выше и составила за 1990-2003 гг. в Наро-Фоминском районе 8,8% (пик в 1999 г. - 23,2%), в Истринском - 8,5% (пик в 1996 г. - 34%).

З.М. Волкова (1955) установила, что в Московской области раннее заражение животных фасциолезом на пастбище происходит в июне, за счет перезимовавшей инвазии. Наибольшая зараженность животных на пастбище отмечается в августе - сентябре и продолжается до конца пастбищного периода животных инвазия достигает наивысшего подъема к декабрю - январю [24].

В.И. Петроченко, Н.Г. Шигнна (1980) установили высокую зараженность личинками фасциол малого прудовика (до 10-13% от всех исследованных), что способствует заражению крупного рогатого скота на пастбищах [24].

Проводя исследования в Московской области Н.П. Сорокина (2004) установило, что у телят текущего года рождения фасциолез начинал регистрироваться в сентябре (7%) с возрастанием до 29% в декабре; у телят предыдущего года рождения инвазия в январе - мае изменялась незначительно (52,3-45,1%), в июне резко снижалась (15%) и до ноября оставалась в пределах 8,7-25,6%, в ноябре и декабре возрастала до 29,4% и 41,2% соответственно; телки случного возраста и нетели (старше 2 лет) оказались наиболее инвазированными. В январе-мае зараженность их составила 70,3-91,6%, в нюне резко снижалась до 20,8%, а к декабрю вновь увеличивалась до 85,3%; у коров 3-5 лет инвазия нарастала с января (71,2%) по февраль (89,9%). В марте - мае изменялась незначительно (75,1-62,3%) и снижалась в нюне (15,2%), в октябре достигала 10,6%, в ноябре - декабре вновь увеличивалась до 20,6-31,0%; зараженность коров 6-12 лет в январе-феврале нарастала до 65,2-84,2%, в марте - мае она изменялась незначительно (62,3-55,4%), а вплоть до октября снижалась. В ноябре - декабре наблюдался новый рост инвазии [11].

К.А. Хромов (2005) установил, что в Московской области наибольшая зараженность фасциолезной инвазией наблюдается в бывших колхозах и совхозах (экстенсивность инвазии - 31,2%). В государственных хозяйствах (пле­менные хозяйства) инвазированность крупного рогатого скота фасциолами составляет 18,4%. Меньше всего инвазированность фасциолами оказалась в личных подворьях граждан, где животные были заражены на 15,2% [26].

По данным К.А. Хромова (2005) в Московской области наибольшая зараженность животных фасциолами отмечена зимой - 38-40,4%, весной 38 -38,5%, меньше осенью 30,9-34,5% и наименьшая зараженность фасциолами приходится на лето от 27,3 до 29,1%. Массовое заражение телят текущего года рождения фасциолами происходит на пастбище в августе - сентябре. [26].

По данным А.З. Мамлеевой (2005) фасциолез широко распространен в хозяйствах Ленинградской области. Максимальную интенсивность эпизоотического процесса отмечали в Выборгском (16,07%), Кингисепском (19,46%), Кировском (16,15%) и Тихвинском (20,05%) районах. В Богситогорском и Гатчинском районах зараженность крупного рогатого скота фасциолами со­ставила, соответственно, 13,5 и 6,83%. Высокий уровень эпизоотического про­цесса в Кингисепском и Тихвинском районах обусловлен метеорологическими особенностями 2000 и 2001 годов в связи с наличием благоприятных условий для развития промежуточных хозяев - моллюсков-лимнеид. Незначительная зараженность животных в Лужском районе (1,36%) объясняется регулярным проведением лечебно-профилактических мероприятий [27].

По данным М.Э. Онуфриенко (2002) в хозяйствах Ленинградской области фасциолезом поражено 62,01% крупного рогатого скота [28].

В Ленинградской области наиболее высокий уровень зараженности фасциолами установлен у коров (76-87%), первотелок и нетелей (62%). У телок 18-20 месяцев экстенсивность инвазии составляет 10-28%, молодняка до 12 месяцев - 12-17%. Максимального уровня (87%) она достигала у коров 4-8 лет. Интенсивность инвазии составляет у коров 4-8 лет 60 экз., у телок случного возрастай нетелей - 12-35, молодняка 12 месяцев - 2-4 экз.

Особенностью эпизоотологии фасциолеза в Северо-Западном районе Российской Федерации является постепенное увеличение экстенсивности инвазии осенью. В хозяйствах Ленинградской области пик ннпазни отмечается в октябре - декабре. В январе - мае уровень зараженности животных снижается. Последнее обеспечивается их дегельминтизацией в стойловый период.

В 2003 году М.Э. Онуфриенко установила, что максимальный уровень зараженности крупного рогатого скота фасциолами в Ленинградской области составил в ноябре - декабре 65% [28].

По данным И.В. Кольцова (2002) фасциолез крупного рогатого скота ежегодно регистрируется практически во всех районах Ленинградской, Псковской и Новгородской областей. Причем в хозяйствах Ленинградской области экстенсивность инвазии по результатам копроовоскопии составляет в среднем от 0,2 до 16,1%. В Псковской области инвазированность животных фасциолами варьирует в пределах от 2,8 до 15%, тогда как в Новгородской области экстенсивиость фасциолезной инвазии была значительно выше и со­ставляла в среднем от 9,1 до 20,1% [29].

В центральном районе Нечерноземья РФ (Владимирская, Ивановская, Костромская, Московская, Тверская и Ярославская области) в 1975-1985 годы средняя экстенсивность инвазии крупного рогатого скота фасциолами составила 48,4 % при средней интенсивности инвазии 38,4 экз. на голову. В 1991-2000 годы экстенсивность инвазии скота фасциолезом резко возросла и достигла 80,8 % при средней интенсивности инвазии 68,4 экземпляров.

По другим данным (Особенности эпизоотологии..., 1989) в центральных областях (Владимирская, Горьковская, Ивановская, Костромская и Ярославская) Нечерноземья крупный рогатый скот инвазирован фасциолезом на 23,4-77,9% при интенсивности инвазии 1-285 экз. Экстенсивность инвазии крупного рогатого скота фасциолезом в хозяйствах северной агроклиматиче­ской зоны, в частности в Ивановской области, колеблется в пределах 50-100% (в среднем - 68%) при интенсивности инвазии - S-I38 экз. фасциол; в центральной зоне - экстенсивность инвазии составила 68.4-100% (75%), при интенсивности инвазии 35-200 экз. и в южной зоне - соответственно 75-100% (88%) и 37-285 экз. фасциол [29].

При этом молодняк крупного рогатого до годовалого возраста заражен фасциолами на 23,4-32,2% при интенсивности инвазии 1-98 экз., от одного до двух лет - на 33-41% при интенсивности инвазии - 18-119 экз., животные старше двух лег - на 62,8-77,9% при интенсивности инвазии - 28-285 экз. на голову. Пик фасциолезной инвазии в хозяйствах этой зоны приходится на ноябрь - февраль; в марте - мае инвазия значительно снижается, что связано с проведением плановых и вынужденных дегельминтизаций животных. Повторное инвазирование перезимовавших животных начинается в конце мая - начале июня и продолжается в течение всего пастбищного периода (по октябрь включительно).

По результатам исследований Ю.Ф. Петрова (1988) во всех областях Нечерноземья пик инвазии фасциолеза у крупного рогатого скота наблюдается в декабре - феврале, в марте - июне инвазия значительно снижается. В июне - августе зараженность животных несколько увеличивается, в сентябре - октябре продолжается интенсивное нарастание инвазии.

Таким образом, в Нечерноземной зоне наблюдаются 2 периода интенсивного заражения животных фасциолами: первый - с середины июня до ав­густа - в результате заглатывания адолескариев, образовавшихся из церкариев, вышедших из организма перезимовавших моллюсков; второй - с середины августа до окончания пастбищного сезона - при заглатывании адолескариев, сформировавшихся из церкариев, вышедших из моллюсков, заразившихся мирацидиями в мае - июле текущего года [30].

Х.С. Абдуллаев (1995)установил в Ивановской области, что максимальная инвазия фасциолами у крупного рогатого скота регистрируется в но­ябре-декабре (экстенсивность инвазии - 88,4-90,2%, интенсивность инвазии -1-380 экз.). В январе - апреле происходит резкий спад экстенсивности и интенсивности инвазии с 86 до 22,6% и с 1-320 до 1-30 экз. Снижение инвазии обеспечивается проведением дегельминтизаций животных в стойловый период. Минимальная инвазия отмечается в начале пастбищного сезона, в мае она составляет 18,4% и I -26 экз. В июне наблюдается подъем фасциолезной инвазии > 26,2% и 1-38 экз., который происходит за счет заражения животных в мае - июне. В дальнейшем, в течение пастбищного периода, инвазия продолжает нарастать и к началу стойлового периода достигает 84,8% при интенсивности инвазии 1-296 экз.

Гельминтологические вскрытия печеней свидетельствуют, что телята I -6-месячного возраста свободны от фасциолезной инвазии, так как они еще не имели контакта с инвазионным началом на пастбищах. Молодняк 7-8-месячного возраста, впервые вышедший на пастбища, инвазирован на 40%, в пе­чени у животных отмечены единичные экземпляры молодых фасциол (1-8 экз.). Телята 9-12-месячного возраста инвазированы фасциолезом сильнее (экстенсивность инвазии - 48%, интенсивность инвазии - 1-28 экз.). С возрастом экстенсивность и интенсивность инвазии у животных увеличивается. Так, животные 13-18-месячноговозраста инвазированы на 75%, при интен­сивности инвазии - 1-96 экз.; крупный рогатый скот 19-24-месячного возраста заражен на 91,7% при интенсивности инвазии - 1-186 экз. Максимальная инва­зия регистрируется у животных 3-8-лстнвго возраста (экстенсивность инвазии - 91,6-100% и интенсивность инвазии - 1-380 экз.).

А.Х. Волков, Г.Ф. Семенова (2002) проводили на мясокомбинате в Республики Татарстан ветосмотр убиваемых животных. Проверка показала, что из 200 голов крупного рогатого скота заражены фасциолами были 37%.

А.Х. Волков, Р.Т. Сафиуллии (2000) показали, что в Республике Татарстан зараженность крупного рогатого скота фасциолами, по данным собст­венных копрологических исследований, составила 26,9% [31].

Д.Г. Латыпов (2010) установил, что зараженность фасциолами крупного рогатого скота в Республике Татарстан составила, в среднем, 2,0-5,6%. Он установил в Республике Татарстан пять условных зон паразитарной системы фасциолеза: благополучная (2 района), слабого (до 2% - 9 районов), умеренного (до 5% - 12 районов), сильного инвазироваиня (от 10 до 36% - 10 районов) и зона периодических вспышек (до 10% - 10 районов) [32].

И.А. Степанов (1962) установил уровень зараженности фасциолезом в Мордовской АССР в различных районах от 4,2 до 52,5%. Интенсивность инвазни колебалась от 1 до 250 экземпляров фасциол в одной печени. При этом заболеваемость крупного рогатого скота фасциолезом характеризуется двумя подъемами. Первый, менее значительный, имеет место в декабре - январе и второй, более выраженный, в мае - июле, с пиком в июне. Максимум заболе­ваемости падает на декабрь месяц. Возрастная динамика инвазированности крупного рогатого скота при фасциолезе характеризуется постепенным на­растанием экстенсивности инвазии от единичных случаев у телят до 65% у животных 6-летнего возраста, снижением ее до 35% у животных в возрасте от 7 до 9 лет и новым нарастанием у животных старшего возраста, вплоть до 100% у животных старше 14 лет. Интенсивность инвазии с возрастом также заметно увеличивается [33].

При сравнении зараженность крупного рогатого скота фасциолами в 10 областях Российской Федерации за 1980-2005 годы наивысшую зараженность крупного рогатого скота фасциолами наблюдали в хозяйствах Ярославской (экстенсивность инвазии — 47,7-48,8%, средняя интенсивность инвазии - 24,9-26,8 экз.). Костромской (44,4-45,6% и 22,4-23,4 экз.), Ивановской (36,4-39,8% и 39,4-42,4 экз.) областях, умеренную - во Владимирской (29,8-31,8% и 11,6-13,6 экз.), Нижегородской (27,8-29,6% и 10,8-13,2 экз.), Ленинградской (12,6-18,8% и 9,4-10,4 экз.) обла­стях и в Чувашской Республике (13,1-19,6% и 12,8-16,6 экз.), наименьшую в Республике Татарстан (12,4-14,6% и 9,6-12,4 экз.) и Самарской области (8,6-12,4% и 4,8-8,8 экз.). В период рыночной экономики (в 1991-2005 годы) во всех 10 субъектах РФ увеличилась зараженность крупного рогатого скота фасциолезом. Так, во Владимирской области экстенсивность инвазии увеличилась в 1,4 раза, средняя интенсивность инвазии - в 1,6 раза. Ивановской — соответственно в 1,6 и 1,7 раза, в Костромской — в 1,2 и 1,7 раза, в Ярославской - в 1,3 и 1,6 раза, Московской и Ленинградской областях — в 1,1 и 1,3 раза, в Самарской области, Республиках Татарстан и Чувашия - в 1,2 и 1,3 раза по сравнению с периодом плановой экономики.

Об установлении диагноза фасциолез крупному рогатому скоту в Кировской области впервые было сообщено B.C. Ершовым после 57 союзной гельминтологической экспедиции в Вятскую губернию (Кировскую область) прошедшей в 1928 году. В дальнейшем в литературе сообщения о фасциолезе в Кировской области немногочисленны. В 1963 г. И.Д. Устинов сообщал о проведенных в Кировской области опытах по переживаемости яиц фасциол в зимний период, В 1999 году Е.Б. Бакина, С.Н. Белозеров изучали лекарственную эффективность ряда препаратов при фасциолезе крупного рогатого скота в Кировской области.

1.2.2 Систематическое положение и анатомо-морфологические особенности фасциол

Систематика и морфология фасциол приведена, в основном, по данным акад. К. И. Скрябина («Трематоды животных и человека», Изд. АН СССР, т. II, 1948) с добавлением описания новых видов фасциол, не вошедших в монографию, и некоторых сведений по гистологии этих трематод.

Систематическое положение фасциол

Тип Plathelminthes, Schneider, 1873; Класс Trematoda, Rudolphi, 1808; Подкласс Digenea, van Beneden, 1858; Отряд Fasciolata, Skrjabin et Schulz, 1937; Надсемейство Fascioloidea, Stiles et Coldberger, 1910; Семейство Fasciolidae, Railliet, 1895; Подсемейство Fascioline, Stiles et Hassall, 1898; Род Fasciola L., 1758. Виды:

Fasciola hepatica, L., 1758

Fasciola gigantica, Cobbold, 1885

Fasciola jacksoni, Cobbold, 1869

Fasciola halli, Sinitsm, 1933

Fasciola californica, Sinitsin, 1933

Описание отдельных видов фасциол

FasciolahepaticaL., 1758 (по К. И. Скрябину и Р. С. Шульцу) (рисунок 1). Синонимы: Distomum hepaticum Reitzius, 1786; Fasciola humana, Gmelin, 1789; Distomum caviae Sonsino, 1890; Cladocoelium hepaticum Stossich, 1892. Тело 20—30 мм длины и 8—12 мм ширины. Шипики на кутикуле передней части тела с дорсальной и вентральной сторон. Кутикула хвостового конца пара­зита гладкая. Передняя часть тела вытянута в виде хо­ботка, где находятся две сближенные одна с другой присоски, начальный участок кишечных стволов с боковыми ответвлениями. Bursa cirri и по­ловые отверстия расположены медианно впереди от брюшной присоски, но позади раз­вилки кишечника. Диаметр ротовой присоски 1 мм, брюшной —1,5—1,6 мм. Боковые части паразита до заднего конца тела (рисунок 2) заняты густыми гроздьями желточников.

Рисунок 1 - Общий вид фасциолы обыкновенной

В задней четверти длины тела правые и левые гроздья разделены между собой светлой полоской, соответствующей расположению экскреторного канала. На протяжении передних трех четвертей длины тела паразита латерально расположенные гроздья желточников отделены от среднего поля паразита темными линиями, которым соответствуют выводные желточные протоки.

На границе передней и средней трети длины тела желточные протоки имеют поперечное направление и формируют на срединной линии тела небольшое расширение — желточный резервуар, при­нимающий все выделения желточных фолликулов и затем продвигающий их в оотип.

Рисунок 2 - Детали внутреннего строения фасциолы обыкновенной (по Лейкарту, — из Чейвдлера, 1956):

Л — строение половой системы. В — строение пищеварительной системы. С — циррус. cec. — кишечник; о.s. — ротовая присоска; v.s. — брюшная присоски; ph. — глотка; mt. —концевой участок матки; oot. —оотип; sp.d. —семяпровод; t1 — передний семенник; t2 — задний семенник; v.d. — желточный протон; v.r. — желточный резервуар; u. — матка; оv. — яичник; g.p. — генитальная пора; с.р. — бурса цирруса.

Поперечные желточные протоки делят среднее поле паразита на переднюю и заднюю части. В задней части один позади другого находятся сильно разветвленные се­менники. От каждого из них отходит по выделительному протоку —vasaefferentia, выносящему продукты муж­ских желез в концевые отделы половой системы — bursacirri — и заключенные в ней элементы. На рисунке 3 - ветвления переднего семенника переходят за границу поперечных желточных ходов.

В передней части паразита преобладает матка, петли которой переплетаются, напоминая по форме розетку.

Сзади матки, в левой части паразита, расположен яичник, напоминающий разветвленный олений рог. Более часто он находится .правой половине тела. Между развилкой кишечника и центром брюшной присоски расположена овальная bursa cirri, из отверстия которой высовывается дугообразно искривленный penis. К ее дну, справа и слева от средин­ной линии, тянутся от семенников vasa efferentia, а около желточного резервуара локализуется комплекс железистых клеток — тельце Мелиса, неправиль­но именовавшееся скорлуповой железой. Петли матки наполнены яйцами. Яйцо фасциолы довольно крупное (0,13—0,145 x 0,07—0,09 мм), овальной формы, желтого или желто-коричневого цвета, покрыто гладкой оболочкой со слабо намечающейся плоской крышечкой на одном конце и иногда небольшим бугорком на другом. Содержимое яйца состоит из массы желточных клеток, среди которых находится яйцевая клетка. В таком виде яйцо покидает тело паразита и выделяется из кишечника животного.

По Скворцову, Смирновой и Сизяковой (1936), оболочка яйца фасциолы состоит ив четырех слоев. Внутренний - из них полупроницаем, наружные же непроницаемы, служат для механической защиты зародыша. Оболочка зрелых яиц устойчива к действию серной, соляной и азотной кислот, едкой щелочи, жиро растворителей и липоидных красок (судан III, судан IV). Только три типа известных животных мембран обладают такой устойчивостью: хитин, кератин и склеротин. Пробы на хитин и кератин оказались отрицательными (Lison, 1936, — по Stephenson'y, 1947). Оболочка зрелых яиц фасциол по многим свойст­вам подобна склеротину, а желточные клетки фасциол содержат «предшественника» склеротина — ортодигидроксифенол.

1.2.3 Биология фасциолы

Жизненный цикл фасциолы проходит с чередованием поколений и со сменой животных-хозяев. Гермафродитное половозрелое поколение (марита) паразитирует у домашних и диких животных, выполняющих роль дефинитивного (окончательного) хозяина. Оплодотворен­ные яйца, откладываемые маритой, выводятся из организ­ма окончательного хозяина во внешнюю среду. При наличии тепла и влаги они развиваются и дают начало свободно плавающим личинкам (мирацидиям), которые, выйдя из яйца, внедряются в ткани моллюска — промежуточного хозяина. Там мирацидии претерпевают регрессивный метаморфоз и проходят ряд стадий развития (спороциста, редия, дочерняя редия, церкарий). Зрелые церкарии выходят из моллюска во внешнюю среду — воду, инцистируются и с кормом или водой попадают в организм дефинитивного хозяина, где после миграции раз­виваются в мариты.

В цикле развития фасциолы К.И. Скрябин и Р.С. Шульц (1935) предложили различать четыре периода: змбриогонию, партеногонию, цистогонию и маритогонию.

Эмбриогония — период эмбрионального развития зародышевой клетки в яйце трематоды начиная с ее оплодотворения и кончая вылуплением мирацидия из яйца. Форма яйца — удлиненно-овальная, светло-желтого или золотистого цвета, размер — 0,12—0,15 мм в длину и 0,07—0,08 мм в ширину. На одном из полюсов яйца находится крышечка. Внутри яйца имеется комплекс клеток, состоящий из оплодотворенной яйцеклетки и окружающих ее 28—30 желточных клеток, служащих для питания зародыша в период его развития и превращения в мирацидия.

Рисунок 3 - Церкарии фасциолы обыкновенной	Рисунок 4 - Адолескарии фасциолы обыкновенной

Партеногония — постэмбриональный период развития личиночных поколений, размножающихся бесполым (партеногенетическим) путем в теле моллюска с момен­та внедрения мирацидия в его организм и до выхождения из него церкариев.

Данные о продолжительности партеногонии фасциолы в моллюсках различные. По мнению многих исследо­вателей, она зависит от возраста, вида моллюска и фак­торов внешней среды.

Анализируя сообщения разных авторов о партеного­нии фасциолы, Е.Е. Шумакович (1957) пишет, что в условиях средней части России в летний период развитие личинок фасциол в моллюсках до стадии церкария продолжается примерно 1,5—2 месяца.

Созревшие церкарии фасциолы через «родильную» пору покидают тело редий и выходят из организма мол­люска.

Выход церкариев из моллюсков продолжается oт 2 до 14 дней и зависит от температуры воды. Вышедшие из моллюска церкарии имеют овальное темно-бурого цвета тело и длинный упругий хвост. На головном конце хорошо заметна ротовая, а в центре тела — брюшная присоска. В одном моллюске развивается свыше 400 цер­кариев.

Церкарии с помощью хвоста совершают быстрые вра­щательные движения в поверхностном слое воды, при­крепляются к различным предметам, на поверхности ко­торых они чаще всего инцистируются (окружаются защитной оболочкой), отбрасывают хвост и превращаются в адолескариев.

Цистогония — процесс превращения церкария в не­подвижную инцистированную форму (адолескарии) во внешней среде. Цистогонией завершается развитие ли­чиночных поколений фасциолы. Она совершается в воде и продолжается 15—30 минут. Величина адолескариев колеблется от 0,2 до 0,24 мм. Во внешней среде адолеска­рии устойчивы и могут сохраняться в зависимости от условий среды от 1 месяца до 1 года. Например, в сене они сохраняются 2—6 месяцев, в силосе — до 1 месяца, в воде — до 1 года.

Маритогония — период развития фасциолы в орга­низме дефинитивного хозяина с момента попадания в не­го адолескария до состояния половозрелой особи (мариты), выделяющей оплодотворенные яйца во внешнюю среду. Животные, заглатывая с водой, травой или сеном адолескариев, заражаются фасциолезом.

Попав в желу­дочно-кишечный тракт и достигнув тонкого отдела ки­шечника, адолескарий освобождается от оболочки, затем через брюшную полость или другими путями попадает в печень, там растет и превращается в неполовозрелую фасциолу, которая проходит через печеночную ткань, выходит в желчные ходы печени, где в течение 2—4 ме­сяцев достигает половой зрелости, т. е. способности выделять яйца.

Приживаемость фасциол в организме де­финитивных хозяев различна и колеблется, по сообще­нию Н.В. Демидова, Л.Ф. Потехиной (1959) и других исследователей, от 13 до 100%. Фасциолы в организме дефинитивного хозяина могут жить около 4—5, реже — 10 лет и более. Половозрелые фасциолы очень плодовиты. По данным Тейлора (1930), каждая фасциола отклады­вает ежедневно около 3,5 тыс. яиц.

1.2.4 Эпизоотология

Уже отмечалось, что для полного развития фасциолы необходим ряд определенных условий: внешняя среда (яйцо, мирацидий), промежуточный хозяин — моллюск (спороцисты, редии и церкарии), затем вновь внешняя среда (церкарии и адолескарии) и дефинитивный хозя­ин—позвоночное животное (неполовозрелые и полово­зрелые фасциолы, выделяющие яйца). Таким образом, внешняя среда, промежуточный и дефинитивный хозяе­ва являются звеньями эпизоотологической цепи. Выпа­дение любого звена нарушает биологический цикл фас­циолы, чем предотвращается появление заразного нача­ла во внешней среде, а, следовательно, и заражение -животных.

Важная роль принадлежит пресноводным моллюс­кам — промежуточным хозяевам фасциол.

Согласно литературным данным, в качестве промежу­точных хозяев фасциолы зарегистрированы 38 видов пре­сноводных моллюсков. В европейских странах и в России облигатным (специфичным) промежуточным хозяином фасциолы обыкновенной считается малый прудовик (Galbatruncatula, Mull, 1774).

Малый прудовик широко распространен. Его можно встретить как на низинных пастбищах, так и на высоко­горных участках, в разнообразных по физико-химическо­му свойству водоемах и влажных местах.

Обследование лугопастбищных угодий и прогонов показало, что малый прудо­вик занимает небольшие участки, в среднем не превыша­ющие 0,02—1% общего массива лугов, пастбищ и прогонов.

Рисунок 5 - Малый прудовик на листьях растений

1.2.5 Сезонная динамика фасциолеза в Казахстане

Сезонная динамика фациолеза крупного рогатого скота проявляется по-разному в различных зонах Казахстана в зависимости от их природных и хозяйственных особенностей. Так, например, на юго-западе Казахстана (Акмолинская, Кызыл-Ординская области) заболевание овец фасциолезом наблюдается в период с ноября по май месяц, главным образом, в зимне-весенее время, причем наивысшая заболеваемость животных со значительным отходом наблюдается в январе и феврале отмечает К.М. Ерболатов (1984).

На юго-востоке Казахстана (Южно-Казахстанская, Жамбылская, Алматинская и Восточно-Казахстанская области), заболевание крупного рогатого скота фасциолезом регистрируется во все сезоны года с двумя наибольшими подъемами инвазии в марте и августе. При этом падеж крупного рогатого скота от фасциолеза наблюдается в период с ноября по апрель месяцы, а наибольшая смертность животных от него падает на март, апрель и август месяцы.

Значительный падеж крупного рогатого скота от фасциолеза осенью следует относить за счет развития инвазии полученной животными весной, так как в этот период овцы заражаются главным образом перезимовавшими в организме моллюсков инвазионными личинками фасциол.

Высокий падеж крупного рогатого скота от фасциол зимой и весной объясняется большим заражением животных адолескариями паразита, предшествующим летом и осенью.

Наблюдениями в ряде животноводческих хозяйств Акмолинской области установлено, что падеж крупного рогатого скота от фасциолеза в весенний и осенний периоды может происходить, преимущественно, среди телят, менее, в результате резкого ухудшения питания животных.

Следует отметить, что краевые особенности эпизоотологии фасциолеза сельскохозяйственных животных крайне мало изучены в некоторых регионах Алматинской области (бывшей Талды-Курганской) и Восточно-Казахстанской (бывшей Семипалатинской) областях.

1.2.6Патогенез

Механическое влияние. Мигрирующие фас­циолы разрушают кишечную и, особенно, печеночную ткань.

Развивающиеся паразиты давят на ткани, раздражают, травматизируют шипиками кутикулы стенки желчных ходов, закупоривают, а иногда и разрывают желчные протоки. Так же действуют фасциолы при локализации их в других органах: лимфатических узлах, легких, мышцах токсическое действие фасциол на и весь организм оказывают выделяемые ими токсины. Для доказательства наличия токсинов в теле фасциол многие авторы испытывали токсические свойства экстрактов из этих паразитов. При этом чаще отмечали соответствующий эффект, хотя в некоторых случаях его наблюдалось. Вопрос о том, происходит интоксикация счет специфических токсинов или связана с выделением g.-продуктов метаболизма или распада фасциол, нельзя считать окончательно разрешенным. Вероятно, имеет место то и другое.

1.2.7 Патологические изменения в печени

Изменения, которые вызываются ранними стадиями развития фасциол, мигрирующих в паренхиме печени хорошо описал К.И.Скрябин (1948).

Печень, увеличенная иногда более, чем на 1/3, переполненная кровью, на поверхности ее видны кровоизлияния, пятнистые помутнения и иногда фибринозный экссудат. При свежем заражении на печени наблюдаются круглые, овальные очаги возвышающиеся над поверхностью до 2 см в диаметре, желто-бурого цвета; в очагах выступают синеватые или темно-красные тяжи 1-2 мм ширины и 2-5 мм длины. На разрезе в этих очагах ткань имеет желто-бурый цвет, который с периферии постепенно переходит в нормальный; в глубину очаги достигают 0,8-2,5 см. В средней части очага обнаруживается гнезда, заполненные свернувшейся кровью (иногда жидкой). При исследовании которых по их ходу можно натолкнуться на фасциол 0,3-1,2 см длины. Совсем свежие очаги достигают лишь размеров просяного зерна или горошины и содержат жидкую кровь. При интенсивной инвазии ходы, образованные фасциолами лежат тесно друг к другу, и отдельные очаги сливаются вместе. Максимального развития процесс достигает через 17-21 день после инвазии. Это стадия болезни Hepatitis fasciolosa acuta.

1.2.8 Клиническая картина

Появление клинических симптомов заболевания фасциолёзом всецело зависит от степени инвазии и от общего состояния животных. При слабой инвазии (единичными паразитами) или даже при средней (десятки паразитов) при нормальных условиях кормления и содержания, видимые клинические симптомы заболевания отсутствуют. Более того, при одном и том же количестве паразитов животные находятся в нормальных условиях питания, можно не заболеть, тогда как животных, ослабленных какими-либо неблагоприятными факторами (недокорм, плохие условия содержания, другие заболевания), такое же количество паразитов вызывает явную клиническую картину фасциолёза и визуальные и возрастные особенности животных. (Л.Г. Панова, 1951).

При острой форме гельминтоза овец, вызванного эк­спериментальным заражением фасциолой гигантской, кли­нические признаки проявляются через 2—1/2 месяца после заражения в виде прогрессирующей бледности конъюнктивы, принимающей матово-белый цвет, в отдель­ных случаях наблюдается желтушность слизистых оболо­чек. Развивается постоянная лихорадка с повышением тем­пературы до 41,2—41,6°, теряется аппетит, иногда наблю­дается геморрагический понос, иногда запор, тимпания. Появляется сильное общее угнетение, тахикардия (до 160—180 ударов в минуту), аритмия, понижение кровяного давления, одышка при поверхностном учащенном дыхании (до 70—80 в минуту). Происходит увеличение и болез­ненность печени, напряжение брюшных мышц, повышается жажда (Г.А. Григорян, 1953, 1958). Смерть при этом происходит при дозах адолескариев от 10 до 100 экземпляров на 1 кг живого веса и наблюдается с 51-го по 109-й, а чаще на 66—89-й день с момента заражения (Э. Давтян, 1953).

П. Страшный (1957) описал вспышку острого фасциолеза на ранней стадии миграции фасциол с высокой смерт­ностью.

Р. Ханбекян (1960—1961) наблюдал острый фасциолез ягнят 5—8-месячного возраста, вызванный фасциолой обык­новенной, в Армении. В клинической картине отмечены: общее угнетение, потеря аппетита, анемичность конъюнктивы, поверхностное и учащенное дыхание; иногда были поносы, чередовавшиеся с запорами. Как отмечает Р.Ханбекян, клиническое прояв­ление острого фасциолеза, вызванного фасциолой обыкновенной (в отличие от такового, вызванного гигантской фасциолой), наблюдалось лишь при наличии в печени боль­шого количества (не менее 900 экземпляров) неполовозре­лых паразитов.

Хроническая форма фасциолеза у овец и крупного рогатого скота ха­рактеризуется, в основном, теми же клиническими призна­ками, но менее выраженными, чем при острой форме. Она соответствует по времени жизнедеятельности половозрелых фасциол.

1.2.9 Особенности иммунитета при гельминтозах и после дегельминтизации

Иммунитет при гельминтозах имеет свои особенности, которые зависят от хозяинно-паразитарных отношений, физиологических и экологических осо­бенностей гельминтов.

Гельминты вызывают не только местные изменения в организме хозяина. Изменения при гельминтозах в органах и тканях хозяина служат пока­зателем нарушения обмена веществ, дистрофических процессов в паренхима­тозных органах и нервной системе, аллергических и иммуноморфологических реакций (Филиппов, 1989) [34].

Иммунная система по Р.В. Петрову (1982) - это совокупность всех лимфоидных органов и скоплении лимфоидиых клеток тела, представляет собой морфологический синоним иммунной системы. Иммунная система имеет два основных способа зашиты от чужеродных агентов, в частности от гельминтов: клеточный иммунный ответ и гуморальный. Функции иммунной системы могут изменяться при различных болезнях животных [30].

У исследователей нет единого мнения о конкретных клеточных элементах, входящих в состав иммунной системы. Предполагают, что главной клеткой является лимфоцит и, как следствие, лимфоидную систему считают синонимом иммунной системы. Вместе с тем, как отмечает О.Г. Алексеева (1987), иммунологический надзор при клеточной кооперации осуществляется не только в системе лимфоцит-лимфоцит, но и в системах макрофаг-лимфо­цит, нейтрофил-лимфоцит в совокупности с гуморальными факторами, выде­ляемыми лимфоцитами, и в системах лимфоцит-эозинофил, базофил-лимфоцит, нейтрофил-эозинофил и др.

К клеточным элементам, регулирующим иммунный ответ, относятся: лимфоциты, макрофаги, нейтрофилы и эозинофилы.

Наряду с осуществлением своей главной функции - фагоцитоза, нейтрофил принимает участие в специфическом звене киллерного эффекта. Его функции тесно связаны с антителами, с системой комплемента, эозинофилами и базофилами.

Основная функция эозинофилов и базофилов - участие в развитии противопаразитарного иммунитета. Эозинофилы, являются первичными эффекторными клетками, которые наиболее активно и действенно борются с гель­минтом и одновременно участвуют в развитии иммунитета.

Среди сывороточных иммуноглобулинов имеется около 2% антител, которым отводится значительная роль при антипаразитарном иммунитете и аллергических реакциях немедленного типа.

Отмечена четко выраженная корреляция между интенсивностью заражения фасциолами и концентрацией антител. Последние появляются в крови на 14 день после заражения и сохраняются в течение 4-5 недель (Филиппов, 1988). Но длительное хроническое течение фасциолеза (Нурхаметов, 1990) приводит к гипопротеинемии, гипоальбуминемии, нарушению альбумино-глобулннового индекса. Указанные показатели возвращаются к исходному уровню на 10-20 день после дегельминтизации при последующей стимуляции [34].

По данным B.C. Ершова (1985), у зараженных фасциолезом животных вырабатываются реагиноподобные антитела и антитела, по биологическим и физическим свойствам схожие с IgE [35].

Защитная роль антител состоит в том, что, соединяясь с антигеном (образуя иммунные комплексы) изменяют его, переводя в неактивное состояние и, таким образом, дают возможность действовать неспецифнческим факторам защиты (Зильбер, 1958) [36].

Образование иммунных комплексов - естественный и нормальный процесс, происходящий в организме (Сура, 1980). Процесс образования иммун­ных комплексов включается для удаления чужеродных антигенов, в том числе паразитарных. Обычно образующиеся иммунные комплексы элиминируются клетками моноцитарной фагоцитарной системы. Однако, в ряде случаев образуются такие иммунные комплексы, которые запускают цепь сложных патологических процессов, т.е. формируются патогенные иммунные комплексы. Реакции, обусловленные иммунными комплексами, играют большую роль в иммунопатологии различных заболеваний.

Необходимо отметить сенсибилизацию организма антигенами гельминта и возникающие при этом аллергические реакции, развивающиеся в от­вет на инвазию. Местное механическое повреждение тканей гельминтами само по себе не существенно, но продукты деструкции тканей хозяина ведут к развитию аутоаллергии. А, так как, тело гельминта и его секреты биологически активны, то они вступают в реакции с компонентами тканей животного, нарушают целостность клеток, образуют иммунные комплексы, привлекают к себе фагоцитов, прямо и косвенно воздействуют на нервные рецепторы, которые по цепочке мобилизуют всю нервную, а через нее н эндокринную систему, тесно связанные с кроветворными, иммунекомпетентными органами. Последние, таким образом, оказываются под непосредственным и косвенным влиянием аллергенов гельминта и разрушенных ими тканей хозяина. В про­цессе дегельминтизации аллергическое состояние животных повышается за пределы гиперэргии как продуктами распавшегося гельминта, так и самим антигельминтиком, развивается перенапряжение и даже истощение компенсаторных и приспособительных механизмов, что ведет к снижению сопротив­ляемости организма.

Для гельминтов характерна многофакторность иммунного ответа и одновременное участие в нем как клеточных, так и гуморальных механизмов. Подтверждено это при фасциолезе в опытах на крысах-донорах, которым вво­дили одновременно сыворотку или лимфоидные клетки иммунных доноров, при этом действие клеточного иммунитета проявлялось позднее, чем гуморального (Филиппов, 1988) [33].

Гельминты имеют не только множество собственных различных антигенов и их вариантов, но и свою иммунную систему, направленную на по­давление сопротивления к нему хозяина.

Развитию паразита в организме хозяина способствует такой феномен, как иммунологическая индукция. Она заключается в способности гельминтов изменять процесс синтеза белка в зависимости от особенностей протеиногенеза у промежуточного и окончательного хозяев с образованием общих бел­ковых антигенов (Structural antigenique..., 1968).

Явления молекулярной мимикрии и иммунологической индукции позволяют считать, что полиморфизм белков организма хозяина должен играть существенную роль в эволюции системы хозяин - паразит, а, следовательно, и оказывать влияние па основные патогенетические механизмы при гельминтозах (Озерецковская, 1975). Выявлена способность тканевых гельминтов выделять иммунодепрессивные вещества, способствующие развитию паразита в организме хозяина [37].

Таким образом, у паразита развиваются определенные свойства, позволяющие ослабить защитные реакции хозяина. К ним относится имитирование антигенов хозяина (молекулярная мимикрия), способность к быстрому изме­нению антигенов, опережающее развитие эффекторных механизмов иммун­ной системы, выделение иммунодепрессивных факторов, явление нммуноло­гической индукции, задержка передачи информации об антигенах иммуно-компегептным клеткам блокирующими антителами или электростатическим и барьерами.

Эти специфические особенности объясняют тот факт, что иммунитет при гельминтозах бывает, как правило, неярко выражен, он характеризуется слабым напряжением и кратковременным действием.

J.K. Dineen (1963); R.T. Damian (1964) предложили гипотезу о приобретении в процессе эволюции толерантности на основе уподобления антигенов паразита химическим структурам тканей хозяина: такие паразиты, с «замас­кированными» антигенами, естественно, не вызывают иммунологических ре­акций и поэтому недосягаемы для защитных мер (антител) хозяина [38,39].

Известно, что под действием некоторых лекарственных препаратов угнетается ряд гуморальных и клеточных показателей резистентности и специ­фического иммунитета после вакцинации при инфекционных болезнях. Также известно иммунодепрессивное действие медикаментозных средств (Ковальчук, 1980), в частности, антибиотиков (Карпуть, 1976) [40, 41].

По данным Э.Х. Даугалиевой (1989) урсовермит снижает иммунный статус животных, поэтому необходимо избегать частых дегельминтизаций, т.к. эти дегельминтизации не дают нужного профнлакгического эффекта в связи с тем, что в последующем увеличивается восприимчивость животных к заражению [42].

О.И. Мамыкова (1988) в опытах на белых мышах установила, что дегельминтизация ивомеком вызывает супрессию Т- и В-лимфоцитов, снижение Ig G-антител, при одновременном увеличении сывороточных иммуноглобулинов Ig М-класса, персистенцню высоких концентраций иммунных комплексов [43].

Химиотерапевтическое вмешательство в патологический процесс при паразитарных болезнях даже при высокой эффективности лечения способствует иммунологическим сдвигам (Озерецковская, 1975; 1987) [44].

Дегельминтизация коров альбамелином при фасциолезе (Абрамов, 2000) вызывает незначительные колебания в гематологической картине в день применения препарата и через 5 суток; к 10 суткам количество эритроцитов и лейкоцитов восстанавливается, эозинофилия отмечалась до 5 суток [1].

Применение коровам вермитана при фасциолезе (Кольцов, 2002) в рекомендуемых дозах вызывает незначительное снижение а-глобулинов сыворотки крови (до 11%) на фоне увеличения у-глобулиновой фракции (до 42%) на 5-й день дачи препарата [29].

Поэтому антгельминтные препараты, кроме того, что должны быть высокоэффективными, дешевыми и малотоксичными, должны быть с иммуно­стимулирующим эффектом. Необходимо определять влияние антгельминтиков на физиологические, биохимические процессы в органах и тканях, а также на иммунобиологические показатели, характеризующие состояние иммунной системы организма.

1.2.10 Обзор антгельминтиков, используемых при терапии фасциолеза

Одной из основных мер борьбы с фасциолезом является дегельминтизация животных, которая широко применяется как с лечебной, так и профи­лактической целью. От наличия достаточного ассортимента высокоэффек­тивных и малотоксичных средств борьбы с гельминтозами во многом зависит успех профилактики фасциолеза животных (Филиппов, 1981) [45].

Ниже представлен обзор препаратов, предложенных для борьбы с фасциолезом у крупного рогатого скота.

Четыреххлорисгый углерод: Предложен R.F. Monlgomerie (1929) для терапии животных при фасциолезе. Ш.А. Азимов (1970) применял четыреххлористый углерод в смеси с перекаленным хлопковым маслом, экстенсэффективность при фасциолезе крупного рогатого скота составила 82,1%. Хо­рошие результаты применения четыреххлористого углерода получены Б.Г. Гариевым (1984); А.Л. Сапуновым, Б.Л. Гаркави, Ю.И. Щербаха (1986) [46, 47, 48].

В настоящее время четыреххлористый углевод не применяется из-за высокой токсичности (Истамов, 1970) и наличия других эффективных менее токсичных препаратов [49].

Гексихол (гетол, хлоксил): лекарственная форма гексахлорпараксилола за счет более тонкого измельчения и добавления до 1% поверхностно-активных веществ.

Внашей стране впервые определили эффективность гетола при фасциолезе мелкого и крупного рогатого скота Н.В. Демидов, B.C. Кривоносой, B.C. Штольба (1962), успешно применяли этот препарат при фасциолезе Е.Ш. Шакиев, A.M. Солдатченко (1984) [50, 51].

Тератогенное, эмбриотоксическое и мутагенное действие гексихола изучала Л.И. Хрусталева (1985), на основании ее данных реализацию мяса и молока от дегельминтизированных гексихолом животных можно проводить практически без ограничений [52].

СИ. Мамержанов, Л.Е. Енин (1986) установили экстенсэффективность гексихола при фасциолезе крупного рогатого скота после однократной обработки 68%, а при условии повторной обработки через 30 дней неосвободившихся от фасциол животных - 100% [53].

Восстановительные процессы в организме животных после дегельминтизации гексихолом изучала И.Б. Сорокина [11].

По данным И.А. Архипова (1998) гексихол в дозе 0,3г/кг для крупного рогатого скота показал 93-98% эффективность при фасциолезе [54].

После первой дегельминтизации гексихолом освобождается от фасциол 96,5% крупного рогатого скота, после второй - 100%.

В.В. Кузьмичев (1998) изучал влияние дегельминтизации с использованием гексихола на микрофлору печени и кишечника. После применения гексихола в печени постепенно снижается количество бактерий, а в кишечнике уменьшается количество протея и клостридий при одновременном увеличении лактобацилл, непатогенных кокковых форм и кишечных палочек, к 150 дню после дегельминтизации все еще сохраняется дисбактериоз кишечника [55].

Гексихол С (политрем): является лекарственной формой 1,4-бис-три-хлорметилбензола. Разработан в ВИГИСе за счет внесения в технолошческий процесс сульфата натрия. Доза политрема для крупного рогатого скота составляет при фасциолезе 0,2 г/кг. Положительными свойствами политрема являются широкий спектр трематоцидного действия, возможность применения на беременных животных, отсутствие выраженных побочных эффектов. Восстановительные процессы в печени после дегельминтизации животных гексихолом С изучала Е.П.Чарыева (1988). М.В. Дорошина (1989) изучала параметры острой и хронической токсичности гексихола С [56, 57].

Гексихол С обладает более высокой фасциолоцидной активностью в отношении половозрелых фасциол, чем гексихол. Гексихол С в дозе 0,3 г/кг массы, примененный коровам симментальской породы с концентрированным кормом однократно, показал экстенеэффектнвность 93,3%, интенеэффективность 93,5% [58].

М.В. Глухова (1994); М.В. Глухова, Т.П. Веселова (1995) рекомендуют применять селенит натрия в дозе 100 мкг/кг массы тела, как надежное специфическое терапевтическое средство при токсикозах, возникающих после применения фасциолоцидов, в частности политрема и гексихола [59, 60].

Е.П. Чарыева, Т.П. Веселова (1992) после лечения полнтрсмом рекомендуют применять поливитамины (витакол) [56].

Куприхол: представляет собой новую лекарственную форму гексахлорпараксилола с внесением фталцианина меди.

И.А. Архипов, ТЛ. Веселова, М.Б. Мусаев (1995) установили, что при фасциолезе крупного рогатого скота интенеэффективность куприхола в дозе 0,15 г/кг составляет 85,6 и 80,0% (по данным 2 опытов). Те же авторы получили 94,7% эффективность куприхола в дозе 0,2 г/кг при фасциолезе крупного рогатого скота [57].

A.M. Биттиров (1999) рекомендует для лечения смешанной инвазии у крупного рогатого скота (в том числе и фасциолез) применять брикеты-лизунцы «Полиант-менэл» на бентонитовой основе, их экстенсэффективность составляет 58,2-66,8% при интенсэффективности 74,5-81,3% [61].

Тетраксихол: создан на основе парабистрихлорметилбензола в комбинации с производными дифенилсульфидов.

По данным И.А. Архипова (1998) тетраксихол в дозе 0,2 г/кг проявил 97-98% эффективность при фасциолезе крупного рогатого скота. Тетраксихол не влияет на репродуктивную систему животных и может применяться беременным. Из организма животных он выделяется в течение 7-16 дней [54].

Поданным Д.Н. Шемякова (1999) тетракснхол при фасциолезе крупного рогатого скота в дозе 0,2 г/кг оказывает 97,4% эффективность. Тетраксихол можно применять групповым методом с кормом, в терапевтических дозах на клинико-гематологические показатели животных не влияет. Однако препарат на неполовозрелых фасциол обладает недостаточным действием [62].

Антитрем: создан стерлитамакским заводом «Каустик» совместно с ИИ «Синтез» на основе парабистрихлорметилбензола с добавлением новых компонентов. И.А. Архипов, Н.М. Меланич, Н.И. Кошеваров (2001) испытали данный препарат и установили, что эффективность антитрема против фасциол в дозе 0,2 г/кг составляет 94,38%, в дозе 0,3 г/кг - 99,79% и в дозе 0,4 г/кг -100%. При этом авторы рекомендуют дозу препарата 0,2 г/кг как терапевтическую [54].

Битионол (актопер, битин, левацид): представляет собой 2,2-дигид-рокси-3,3,5,5-тетрахлордифенил сул ьфид.

В опытах Н. Ueno, S. Watanabe, Y. Fujita (1960) битин оказался эффективным при фасциолезе.

J. Horak (1965) отмечал, что битионол в дозе 100 мг/кг оказал 100% эффект против 21-дневных трематод крупного рогатого скота [63].

Битионол был ресинтезирован в ВИГИСе и испытан при фасциолезе А.Е. Журавцом (1968). В.И. Ткач (1968) изучил влияние битионола на двигательную активность фасциол. М.В. Дорошина, Л.И. Хрусталева, Э.А. Брагина (1987) изучали эмбриотоксическое и тератогенное действие битионола. Под­тверждают высокую фасциолоцидную активность битионола Х.В. Аюпова, Г.З. Хазиева (1974); Р.Т. Сафиуллина, А.С. Вечеркина (1997) [64, 65, 66, 67].

Сульфен (сульфоксид): в химическом отношении представляет собой 2"2'-диокси-3'35,5 -тетрахлордифенил сульфоксид.

Ж.Г. Райхер (1974) установил терапевтическую дозу сульфена 0,05 г/кг при фасциолезе крупного рогатого скота, в смеси с кормом, однократно, при этом экстенсэффективность сульфена составила 93,4 - 100%, а интенсэффективность 99,66 - 100% [68].

Фасциолоцидные свойства сульфоксида и его кинетический обмен в организме животных изучал И.Л. Бабонас (1975). [64].

По данным М.А. Белоусова (1976) сульфен не обладает кумулятивным и аллергенным действием, оказывает тормозящее действие на антитоксическую функцию печени. Введенный перорально в терапевтических дозах крупному рогатому скоту (50 мг/кг) не вызывает токсического действия [65].

Сульфен высокоэффективен при фасциолезе крупного рогатого скота в дозе 50-100 мг/кг, не вызывает осложнений у дойных коров (Демидов, 1977; 1978). Использование препарата в комплексе мер борьбы с фасциолезом крупного рогатого скота в Калининградской области показало, что его эффективность равна 99,8% [50].

Днамфенетид (корибан, дифеннд, ацемидофен, ацетпикол): пред­ставляет 2,2-бис(р-ацегиламинофенокси) диэтилэфир.

S. Dickerson, М. Hareenest, Р.А. Kingsbury (1971) впервые установили фасциолоцидный эффект диамфенетида. Авторами установлена 85-100% эффективность препарата в дозе 80-100 мг/кг против 1-6-недельных фасциол, а в дозе 80-120 мг/кг 85-95%-ная активность против 8-недельных фасциол. [69].

По данным J.C. Wood (1971) эффективность корибана в дозе 10 мг/кг по ДВ была равной 100% против 1-3-недельных фасциол, 99,3% против 5-недельных, 86,0% против 7-недельных и 65% против 10-недельных фасциол. [70].

С высоким антгельминтным эффектом применял диамфеннтид J.Whitehead (1976) [71].

Диамфенетид был ресинтезирован в нашей стране в ВИГИСе под названием ацемидофен (в настоящее время не производится) и в ВГНКИ под названием дифенид. Высокую эффективность ацимидофсна при фасциолезе подтверждают АЛО. Вишняускас, Е.Н. Василевич (1983) [72].

И.А. Нисенбаум (1985) установил, что после лечения ацемидофеном в печени происходит постепенное ослабление регрессивных изменений, вызванных острым миграционным фасциолезом, отмечаются заживление трав­матических повреждении, уменьшение клеточной реакции и соединитель­нотканных разрастаний, нормализация гистохимических сдвигов, появляются фолликул оподобные образования [73].

Гепатотропное влияние ацемидофена установили Х.Г. Нурхаметов, В.Н. Байматов, Г.Р. Шакпрова (1992) [74].

А.Ю. Вишняускас, K.Ю. Бараускас, А.А. Вишняускас (1988) установили, что aцидoфeн при однократном введении в дозе 40 мг/кг не проявляет фасциолоцидной активности, но длительное ежедневное назначение его в таких дозах показало высокую эффективность [75].

По данным В.В. Кузьмичева (1998) после дегельминтизации животных ацемидофеном резко снижается активность кишечных ферментов (энтерокиназы и щелочной фосфотазы), их уровень приходит в норму только к 60-150 дню после проведенного лечения [55].

Ацетвикол показал высокую эффективность при фасциолезе в дозе 150 /кг массы животного [76].

Билевон предложен при фасциолезе K.L. Kuttler, N.J. Mattews, D.W. Marble (1963). Испытан билевенол при фасциолезе в разных странах (Badania nad trapia..., 1964). Препарат в дозе 4 мг/кг по ДВ оказал высокий фасциолоцидный эффект. Высокую эффективность бнлевона при фасциолезе под­твердил К. Исмаилов (1973) [77, 78].

В.К. Чернуха, В.П. Ревуцкий (1984) установили, что наиболее эффективным антгельмннтиком при фасциолезе крупного рогатого скота в сравнении с гексахлорпараксилолом оказался венгерский препарат дертил Б. По данным эксперимента, его экстенеэффективность составила 100%, гексахлор параксилола - 90%. Интенеэффективность дертила также была значительно выше. При применении указанных препаратов в производственных условиях показатели экстенеэффективности дертила Б были несколько ниже и колебались в пределах 97,5-100%. Лечебное действие гексахлорпараксилола проявлялось у 93% дегельминтизированных животных, а у части больных сохранялась фасциолезная инвазия при относительно высокой ее интенсивности (два-три яйца в кале пробы) [79].

Высокую эффективность дертила при фасциолезе подтверждает А.Ю. Вишняускас (1987) [72].

В.Г. Москалев, М.Ш. Акбаев (1989) сравнили эффективность различных лекарственных форм дертила Б. Экстенеэффективность дертила Б в форме таблеток в дозе 3 мг/кг (задавали на корень языка) составила 66,7-96,0%, а в дозе 4,5 мг/кг в виде водной суспензии - 95,8%, в смеси с комбикормом 91,7%. Исходя из полученных результатов, авторы рекомендуют для применения в условиях Нечерноземья (при хроническом фасциолезе) дертил Б в дозе 4,5 мг/ кг массы тела в измельченном виде с комбикормом [80].

Многолетние исследования показали, что после первой обработки дертилом Б освобождаются от фасциол только 75% животных, после второй -94,6% и лишь после третьей дегельминтизации достигается 100%-ная эфективность (Особенности эпизоотологии..., 1989).

Ниттроксинил (довеникс, тродакс, фасциолид, днемносикс): в химическом отношении представляет собой - 4-окси-3-йод-5-ннтробешотрил.

Впервые о фасциолоцидном действии нитроксинила в дозе 8 мг/кг сообщали М. Davis (1966); М. Davis, J. Rosenbaum, D.E. Wiigh (1969). [81].

Эффективность нитроксинила при фасциолезе установлена также в опытах Y.M. Lucas (1967); С. Chirol, R. Demeure, М. Desmoulins (1969). По мнению этих авторов эффект препарата повышается с увеличением его дозы, а также с возрастом фасциол. Ннтрокснкнл показал 100% эффективность против 6 и 10-недельных фасциол в дозе соответственно 20 и 10 мг/кг.

J. Reuss (1971) применял довеникс для лечения фасциолеза крупного рогатого скота в дозе 10 мг/кг. При этом у животных, подвергавшихся двукратному лечению, доля выделявших яйца фасциол снизилась с 76, 4 до 4,8%, а среди однократно леченых коров с 88,9 до 11,1%. Лечение довениксом лактирующих коров вызывало через один день после аппликации снижение удоя примерно на 1 л. [82].

Применение нитроксинила не оказывает отрицательное влияние на физиологическое состояние животных в период беременности. Использовать молоко от дегельминтизированных животных в течение трех дней или направлять их на убой ранее 30-дневного срока не.

Высокую антгельминтную эффективность нитроксинила подтвердили в своих исследованиях W. Foreyt, A. Todd (1976).

Е.Б. Бакина, С.Н. Белозеров (1999) применяли дисмиоксис для лечения фасциолеза крупного рогатого скота в дозе 0,8 мл/25 кг массы (это на 0,2 мл ниже рекомендуемой по инструкции дозы), подкожно. При этом экстенеэффективность препарата составила 100% [83].

Установлено, что экстенсэффективность дисмиоксиса (10мг/кг массы тепа по действующему веществу подкожно, однократно) составляет 89,9%.

Занил (оксиклозанид, диплин, метилин, салинид, дистодин, залинокс): 3,3,3,5,6-петахлор-2-гидроксисалициаланилид оказался эффективным при фасциолезе, о чем сообщал W.H. Jones (1966). Им испытан препарат в дозе 10-20 мг/кг и получен 100%-ный эффект при фасциолезе [84].

Высокая эффективность заняла в дозе 15 мг/кг при фасциолезе жвачных животных получена Р.Н. Kelsey (1966); J.K. Walley (1966); G. Froyd (1968). Отмечено, что с возрастом фасциол активность занила повышается. Следует отметить то, что препарат быстро выделяется из организма леченых животных, а в молоке коров уже через 2 дня после лечения препарат не обнаруживается.

Ж.Г. Райхер (1974) установил, что занил в форме суспензии в дозе 30 мл/100кг живого веса, но не более 100 мл на животное при фасциолезе крупного рогатого скота экстенсэффективен на 93,3% и интенсэффсктивен на 99,64%.

В опытах получена 99-100% эффективность оксиклозанида (Effectivitad dedas..., 1981). [85].

В дозе 12,5мг/кг занил на крупном рогатом скоте проявил фасциолоцидный эффект на уровне 70% интенеэффективности (Рудайтис, 1983). [86].

Занил под названием салинид был ресинтезирован в ВИГИСе. Д.А.Пакятурене (1989) установила терапевтическую дозу салинида при хроническом фасциолезе крупного рогатого скота 15мг/кг живого веса. При этом интенсэффективность составляет 99%.

Рафоксаинд (рапид, флуканид, дисалан, урсовермит, дисалар, афасцил): 3,5-дийодо-3'-хлор-4'-(п-хлорфенокси)-салициланилид.

Впервые был предложен и испытан при фасциолезе П. Mrozik. В опытах рафоксанид оказывал 99%-ный эффект на взрослых фасциол в дозе 7,5мг/кг живой массы тела. С уменьшением возраста снижается эффективность препарата, в такой же дозе 4-недельные гельминты погибали на 50%, а 6-недельныс на 90%.

Высокая эффективность рафоксанида при фасциолезе была получена в опытах J. Guilhon, G. Jolivet, R.L. Caillier (1970) [87].

Рафоксанид был ресинтезирован в нашей стране Л.П. Хитенковой, В.Б. Писковым, В.Ш. Полуэктовым (1976). Против взрослых фасциол эффективность препарата в дозе 15 мг/кг составила 100% [88].

А.В. Поникаров (1989); Ю. Анакина (1995) рекомендуют для борьбы с фасциолезом крупного рогатого скота использовать дисалаи. Он предложен для применения в форме суспензии, болюсов, лечебных кормосмесей, растворов. Как при пероральном. так и при внутримышечном введении растворы дисалана значительно эффективнее суспензий. Более чем 90% фасциол унич­тожается при введении 2,5 мг на 1 кг живой массы 5%-ного раствора дисалана или 10 мг/кг 5% суспензии.

По данным Ю.Ф. Петрова (1991) дегельминтизация животных в хрони­ческой стадии болезни (на 90-120 сутки инвазии) с помощью дисалана хотя и вызывает улучшение функций органов эндокринной системы, но они до нор­мы практически не восстанавливаются. Поэтому у переболевших животных продуктивность остается низкой, они теряют племенные качества.

В последние годы новую лекарственную форму рафоксанида - дисалар (инъекционный раствор) подробно изучил и внедрил в ветеринарную прак­тику страны А.С. Пушкарей (1998; 1999). По данным этого автора дисалар в дозе 2,5 мг/кг по действующему веществу показал 98-100% эффект против имагинальных фасциол.

По данным И.В. Кольцова (2002) эффективность дисалара в дозе 2,5 мг/ кг массы тела по действующе^ веществу составила 100%. Введение дисалара приводит к увеличению содержания у-глобулинов к 10 дню (до 45%) на фоне стабильно низкого количества а-глобулинов (на 2-3% ниже нормы). Введение коровам диеалара в рекомендуемых дозах приводит к профессирующему снижению к 10 дню титруемой кислотности молока на 1,7°Т.

А.С. Пушкарев (1999) установил, что эффективность дисалара при фасциолезе крупного рогатого скота составляет 92-98,5%. Однако препарат сни­жает иммунобиологическую реактивность организма в течение 10 дней с по­следующим ее повышением [90].

По данным В.Н. Савельева (1981) высокой фаецнолоцидной активностью обладают рафоксанид в дозе 10 мг/кг, дертил из расчета 3 мг/кг и дисалан в дозе 10-15 мг/кг. Экстенеэффективность их составила 80%, интенеэф­фективность соответственно 98,2%, 99,7% и 99,2%.

По данным Д.А. Азимова, ЕЛИ. Шакнева, М.К. Кожабаева (1991) экстенсэффективность урсовермита при фасциолезе составляет 90%, а интенеэффективность 93,7%.

А.Х. Волков, Р.Т. Сафиуллин (2000) определяли эффективность урсовермита при фасциолезе. Экстенеэффективность урсовермита (7,5 мг/кг внутрь однократно) составила 90% [31].

С.В. Березкина, Т.Д. Черкасова, В.А. Юркин (2004) рекомендуют использовать афасцил против половозрелых фасциол в дозе 1 мл/40 кг (2,5 мг/кг по ДВ), против неполовозрелых фасциол в дозе 1 ыл/20 кг (5,0 мг/кг по дей­ствующему веществу) массы тела, но не более 5 мл в одно место. В рекомендуемых дозах афасцил не обладает эмбриотоксическими, тератогенными, иммунотоксическимп и аллергенными свойствами. Убой на мясо крупного ро­гатого скота и использование молока разрешается не ранее, чем через 20 дней после лечения [31].

К.А. Хромов (2005) установил 100% эффективность афасцила против фасциол крупного рогатого скота в дозе 2,5 мг/кг по действующему веществу подкожно однократно [90].

Клозантел (роленол, фасковерм, флукивер, клосантел, клозантекс, сан тел): N-5-хлор-4-(4-хлорфенил) цианометил-2-метилфенил-2-гндрокси-3,5-дн йодобензамид.

Н. Van-Canteren, J. Vanderbergc (1985) в своих исследованиях при первичной оценке переносимости клозантела у крупного рогатого скота, овец и коз в дозах 5-30 мг/кг подкожно, внутримышечно и через рот наблюдали при­пухлость в месте введения при внутримышечном и подкожном введении и ка­шель у овец при введении через рот, серьезных побочных реакций не наблюдали. Также была научена острая и подострая токсичность клозантела при назначении крупному рогатохгу скоту и овцам при различных путях введения. При введении препарат в дозах 40 и 35 мг/кг внутримышечно однократно отмечали гибель животных. По данным этих же авторов при пероральном введении клозантела в дозе 82,5 мг/кг не была токсична для крупного рогатого скота, а доза 70 мг/кг привела к смерти двух из трех овец. При вскрытии у животных было обнаружено набухание эпидермиса, но значительных аномалий не наблюдали.

Полностью уничтожила половозрелых фасциол у коров инъекция клозантела однократно подкожно в дозе 2,5 мг/кг в опытах [91].

Е.Б. Бакина, С.Н. Белозеров (1999) применяли роленол в дозе 0,4 мл/10 кг массы тела животных однократно (это на 0,1 мл меньше инструктивной дозы) для крупного рогатого скота против фасциолеза. При этом экстенесффективноегь роленола составила 96-100% [83].

Экстенсэффективность роленола в дозе 0,5 мл на 10 кг массы тела, внутримышечно составляет 71% (Эпизоотология фасциолеза..., 2000).

Фасковерм обладает эффективностью при подкожном и внутримышечном введении в дозе 2,5 мг/кг при фасциолезе крупного рогатого скота (Act-ividad antmelmmtica..., 1983).

А.И. Ятусевич (1991) при испытании фасковерма на крупном рогатом скоте, спонтанно зараженном фасциолами, получил 97-99%-ную эффективность [92].

В.Г. Москалев, М.Ш. Акбаев (1989) показали экстенсэффективность фасковерма 91,7%, доза фасковерма 2,5 мг/кг массы тела животного [80].

Эффективность против фасциол крупного рогатого скота фасковерма в виде болюсов в дозе 5 мг/кг составляет 98,1%. Из 25 леченых животных 22 полностью освободились от трематод. Мясо и молоко от леченных животных можно использовать в пищу, соответственно, через 28 и 14 дней после введения фасковерма. Препарат хорошо переносится животными и в терапевтиче­ских дозах безопасен даже беременным (Фасковерм в виде..., 1998).

Эффективность фасковерма (Особенности эпизоотического..., 1989) высока. Так, после первой дегельминтизации данным препаратом освобождают­ся от фасциол 98-99,5% крупного рогатого скота, после второй - 100%.

Сантел в дозе 5 мг/кг внутримышечно и перорально обеспечивает 99,2-99,5%-ную эффективность при фасциолезе крупного рогатого скота (Спектр противопаразитарного..., 1998).

Р.Т. Сафиуллин, Н. Бурмистров, А.Х. Волков (1999) в опытах пока­зали, что при фасциолезе крупного рогатого скота сантел 10%-ный в дозе по действующему веществу 5мг/кг внутримышечно однократно обеспечивает 100%-ную экстенеэффективность, в производственных же условиях экстенсэффективиость саптела при фасциолезе равнялась 97,62% [9].

Аверзантел и Авсрсект плюс: действующим веществом данных препаратов является природный авермектиновый комплекс, полученный на ос­нове продуктов жизнедеятельности почвенного гриба Streptomyces avermitilis. B.C. Зубков (2002) при изучении эффективности аверзантела и аверсект плюс при фасциолезе крупного рогатого скота установил, что более удобен в применении аверсект плюс (введение перорально), для него показана эффектвная минимальная доза 28 мг/кг перорально, однократно, при этом экстенеэффективность составила 100%. Эффективная минимальная доза для аверзантела сосоставила 0,03 мг/кг подкожно, однократно, при этом экстенеэффективность была также 100% [93].

Также препараты аверзантсл и аверсект плюс оказались эффективными при микстинвазиях (фасциолез - стронтилятозы пищеварительного тракта) экстенеэффективность - 100%.

Тегалид: представляет собой 3,5-дибром-3-(4-хлорбензонл)-4-хлорсалициланилид, был синтезирован в ИМПиТМ им. Марциновского.

Тегалид в дозе 20 и 30 мг/кг массы тела при индивидуальной однократной даче вовнутрь в виде суспензии вызывает изгнание 100% половозрелых фасциол. При групповом применении в смеси с кормом в дозе 30 мг/кг экс­тенеэффективность тегалида составляет 93,4% при иитенеэффективности -99,7% (Токсикологическая оценка..., 1986).

И.Б. Сорокина, А.В. Шорыгин, А.Ю. Большакова (1991) установили 100% эффективность мелкодисперсного тегалида в дозах 12,5 и 20 мг/кг [40].

Триклабендазол (фазинекс): 2,3-дихлорфенокси-2-метилтиобензими дазол при испытании на крупном рогатом скоте показал фасциолоцидный эффект (Chemoprophylaxic of fasc'ioliasis..., 1981). Фазинекс в дозе 5 мг/кг проявил 91, 98 и 100%-ный эффект, соответственно, против 4, 8 и 12-недельных фасциол, а вдозе 10 мг/кг 75, 95 и 100%-ную эффективность, соответственно, против 1,4 и 6- недельных фасциол.

Т.М. Graig, R. Hucy (1984) установили 100%-ную эффективность триклабендазола в дозе 0,006 и 0,012 г/кг против фасциол у крупного рогатого

Фазинекс в дозе 10 мг/кг массы животного при подостром течении фасциолеза обеспечил 100%-ную эффективность, при острой форме интенеэф­фективность равнялась 99,92%, а экстенеэффективность - 87,03%. Фазинекс в дозе 5 мг/кг массы животного при хронической форме фасциолеза был эффективен на 98%. В настоящее время фирма-производитель пересмотрела дозировку антгельминтика и рекомендует при хроническом течении заболевания применять его в дозе 10 мг/кг живой массы; Фазинекс в. дозе 12 мг/кг массы животного, при хроническом течении фасциолеза крупного рогатого скота проявил эффективность 92,8-100%. Слабые животные хорошо переносили фазинекс. который не вызывал осложнений (Эффективность фазинекса..., 1986). Экстенсэффективность триклабендазола в форме 10%-ного гранулята фазинекса в дозе 0,006 г/кг (по действующему веществу) при хроническом фасциолезе молодняка крупного рогатого скота составила 92,9% (Применение фазинекса..., 1987).

Но данным A.M. Атаепа (1990) экстенсэффективность фазинекса в дозе 10 мг/кг живой массы при остром фасциолезе составила 94%, при хроническом фасциолезе - до 97%.

По данным R.M. Waruiru, Е.Н. Weda (1994) препарат вызывал 95,9 — 100%-ное снижение количество яиц гельминтов в фекалиях коров естественно инвазированных фасциолами.

Снижение периода между обработками повышает эффективность борьбы с фасциолезом (Kinelics off egg..., 1999). Достичь 100% и 85,7%-ную экс­тенсэффективность можно в том случае, если применять триклабендазол с периодичностью 56 дней и через 112 дней, соответственно.

По данным И.А. Архипова, М.Б. Мусаева (2004) против молодых фасциол триклабендазол эффективен в дозе 5,0 мг/кг, а против взрослых в дозе 12,0 мг/кт.

А. Вильявиченко (2006) изучил эффективность 3 препаратов против фасциолеза крупного рогатого скота: триклабендазол вдозе 12 мл/кг живой массы, однократно перорально; рикобендазол в форме 15% раствора в дозе 1 мл/40 кг живой массы, внутримышечно; альбендазол в форме 10% раствора в дозе 10 мл/100 кг живой массы, внутримышечно. Экстенсэффек­тивность триклабендазола составила 80%, рикобендазола - 40% и альбендазола - 10%.

Люксабендлзол: представляет собой 5,4-флуорфенилсульфбензимидазол-2-карбамат.

Люксабендазол в дозе 10 мг/кг показал 95,2 и 95,0%-ную эффективность, соответственно, против молодых и взрослых фасциол (Efficacy of luxabendazoli..., 1987).

Альбендазол (валбазен, альбамелнп, альбамел, альбедазен 10%, альбен, альвет, вермитан, синвермин, агазол): представляет собой 5-пропил-тио-1 -бензимидазол-2-карбамат.

Альбендазол в дозе 10 мг/кг показал 93-100%-ныЙ эффект при фасциолезе крупного рогатого скота (Anthelmintic activity..., 1976).

Но препарат не рекомендуется применять лакгирующим коровам; молоко которых используется в пищу людям, а мясо не используют в пищу в те­чение 14 дней после лечения животных. Вследствие наличия у препарата эм-бриогропных свойств он не рекомендуется для применения животным в период беременности (Theodorides, 1977).

Есть сообщения, что в дозе 15 мг/кг препарат обладает недостаточной эффективностью при фасциолезе крупного рогатого скота, и она составила только 54% (Herlich, VJ. Theodorides, J.E. Freeman (1980) получили хороший анттельминтный эффект от применения альбендазола в дозе 5-10 мг/кг, в том числе и против фасциолеза крупного рогатого скота [94].

По данным R.E. Bradley, W.F. Randell, D.A. Armstrong (1981) даже при повышении дозы до 75 мг/кг ныв не было получено должного эффекта при фасциолезе крупного рогатого скота.

Т.С. Новик (1992) изучала способы снижения эмбриотоксического, тератогенного и антимитотического действия альбендазола.

В ВИГИСе была создана новая микрокапсулированная форма альбендазола, не обладающая эмбрнотропным действием, которая при испытании в дозе 7,5 мг/кг оказала выраженное фасциолоцидное действие (Архипов, Шемяков, 1999).

B.C. Зубков (2002) установил эффективность альбендазола при фасциолезной инвазии 33,3%.

Альвет (20%-ный гранулят) в дозе 10 мг/кг по действующему веществу однократно с кормом показал ингенеэффективность 95,63% при экстенеэффективпости 86,7% (Препараты альбеидазола..., 2004).

В.Е. Абрамов (2000) приннмал участие в разработке и изучении нового противопаразитарного препарата на основе альбеидазола - альбамелина, этот порошок представляет собой смесь альбеидазола и цеолита в соотношении 10:90. Альбамслин задавали коровам перорально в дозе 7,5 мг/кг по ДВ.

Выявлена 100, 97,3 и 91,8% эффективность альбамелина против взрослых фасциол в дозе соответственно 125, ЮОи 75 мг/кг.

Е.Б. Бакина, С.Н. Бслозеров (1999) испытали вермитаи в виде 10% суспензии в дозе 10 мл/100 кг массы, перорально, и 20% гранулированного порошка в дозе 5 г/100кг массы, перорально, на крупном рогатом скоте, инва-зированном фасциолами. Обе лекарственные формы вермитана показали 100% экстенсэффективность в отношении фасциол.

Х. Волков (1999) установил, что от однократного применения вермитана в дозе 5г/100 кг живой массы при фасциолезе крупного рогатого скота ингенеэффективность равнялась 96, а экстенсэффективность - 78,5%.

Е. Абрамов (2000) установил эффективность вермитана против имагинальных фасциол в терапевтической дозе 10мг/кг по действующему веще­ству 94,5%.

И.В. Кольцов (2002) установил, что эффективность вермитана в дозе 7,5 мг/кг массы тела по действующему веществу составляет 96% против половозрелых форм фасциол. Введение коровам вермитана приводит к прогрес­сирующему снижению к 10-му дню титруемой кислотности молока на 2,9°Т.

Албент (смесь альбендазола 0,15 г/кг + бентоит 0,2 г/кг): По данным Л.И. Малкандуевой (2004) «Албент» в дозе 0,35 г/кг массы тела по отношению половозрелых фасциол у бычков показал эффективность 85,5-89,1%. Клозальбен: препарат на основе клозантела и альбендазола [95].

В.Е. Абрамов, И.А. Архипов, Н.И. Кошеваров (1999) установили, что клозальбен в дозе 6 мг/кг по ДВ эффективен на 95,4% при фасциолезе крупного рогатого скота [96].

По данным В.Е. Абрамова (2000) клозальбен в дозе 80 мг/кг массы животного высокоэффективен при фасциолезе крупного рогатого скота (эффек­тивность - 97,7%) [96].

Иммунопаразитан: Иммунопаразитан, обладающий уникальной струк­турой, можно отнести к разряду полуспецифических иммуностимуляторов, так как он активирует специфические клоны иммунокомпетентных клеток (определенные клоны Т-лимфоцитов, эффекторы гиперчувствительности за­медленного типа), ответственные за противопаразитарную защиту организма. По данным А.И. Федорова, В.И. Искандарова (2005) эффективность примене­ния иммунопаразитана составляет более 90%. Использование иммунопаразитана у животных позволяет существенно повысить продуктивность (привесы увеличиваются на 5-15%, надои молока - на 15-25%.

Отмечено заметное повышение надоев молока, от 12 до 18%, в хозяйствах, где использовали иммунопаразитан, кроме этого снизилась выбраковка печени с 80 до 35%. При этом если корова убита до 5-6-й лактации, то в пече­ни фасциол обнаружить невозможно. У старых коров регенерация печени идет медленнее, встречаются очаги петрификации и можно обнаружить еди­ничных фасциол. Оказалось, что система применения нммунопаразнтана по­зволяет снизить и гибель новорожденного молодняка, уменьшить у коров ко­личество гинекологических заболеваний и улучшить показатели по осеменяемости (Иммунопаразитан..., 2004).

Н.П. Сорокина (2004) рекомендует применение комплексной терапии, совместное применение этих препаратов позволяет получить более высокий антигельминтиый эффект по сравнению с их раздельным применением. Экстенсэффективность лечения при применении политрема и иммунопаразитана составила 90% и 80%, соответственно, при комплексном применении - 99%.

Ивомек плюс (ивомек Ф): является комбинированным препаратом. Соотношение действующих веществ в нем: 1% ивермектина и 10% клорсулона, назначают в дозе из расчета 1мл на 50 кг массы подкожно.

И.А. Архипов, Д.Р. Архипова (1990) испытали рекомендованную дозу препарата при остром и хроническом фасциолезе коров, и получили 62 и 98,7%-ную эффективность соответственно.

Спитомектин: содержит в качестве действующего вещества 0,5% ивермектина и 12,5% клозантела.

Фармако-токсикологическую характеристику и терапевтическую эффективность комплексного препарата «сантомектин» при паразитарных бо­лезнях крупного рогатого скота изучал Сафиуллин (2003).

Сантомекган в дозе из расчета I мл на 50 кг массы обеспечил при спонтанном фасциолезе экстенсэффективность - 100% (Эффективность сантомек-тина, 2002).

По данным И.В. Кольцова (2002) эффективность нового антгельминт-ного препарата сантомектина в дозе 1 мл на 50 кг массы тела составляет 100% против половозрелых форм фасциол.

Тенназин: новый препарат, синтезирован в г. Казань. А.Х. Волков (1996) проводил испытания этого антгельминтика и установил, что эффективность тениазина при фасциолезе крупного рогатого скота в дозе 0,1 г/кг составляет 78%.

В.В. Кузьмичев (1998) разработал схемы лечения ассоциированной болезни, вызванной паразитированием фасциол и бактерий.

Первая схема. Вначале больных животных дегельминтизируют высокоэффективным фасциолоцидом; на 2-3-4 сутки после дегельминтизации животным дают препараты, приготовленные из облигатной микрофлоры (ацидофильные, пропионовокислые бактерии, азотобактер и т.д.). Такое лечение позволяет вылечить 99-100% животных, у последних печень быстро освобождается от бактерий, нормализуется микрофлора кишечника, восстанавливаются функции органов и систем на 60-90 сутки лечения.

Вторая схема. Вначале больных животных дегельминтизируют фасциолоцидом; после чего на 2-3-4 сутки им с кормом дают антибиотики, а на 6-7-8 сутки - препараты, приготовленные из облигатной микрофлоры. При при­менении этой схемы выздоравливают 98-100% животных, состав микрофлоры кишечника и печени у них нормализуется на 60-90 сутки.

Третья схема. Больным фасциолезом животным на 2-3-4 сутки после обработки антгельминтиком с кормом дают сульфаниламидные препараты, а на 6-7-8 сутки - препараты, приготовленные из облигатной микрофлоры. Применение данной схемы позволяет вылечить 98-100% животных, у них нормализуется микрофлора кишечника на 60-90 сутки.

С.С. Липицкий (1991) установил, что более активно протекают восстановительные процессы в организме животных после дегельминтизации (при фасциолезе крупного рогатого скота), которым, кроме этиотропной терапии, применяли декстрановые препараты: микроанемин, содержащий микроэле­менты, железо, медь, кобальт, или ДИФ, содержащий железо и йод, с после­дующим назначением метилмотионинсульфония хлорида [97].

1.3 Цель, задачи, объекты исследования и практическая база

Целью исследований явилось изучение распространения фасциолеза, усовершенствование методов лечения фасциолеза сельскохозяйственных животных.

Задачи исследования:

1. Изучить организацию ветеринарно-санитарного надзора на рынке «Жетысу».

2. Изучить экстенсивность и интенсивность инвазии фасциолезом поступающих на рынок туш животных.

3. Изучить качественные показатели мяса животных, пораженных фасциолезом (органолептические и биохимические исследования).

4. Отработать технологию производства таблеток для дегельминтизации.

5. Вычислить экономический ущерб и экономический эффект при лечении фасциолеза.

Объекты исследования

Печень крупного рогатого скота, поступающая с тушами на рынок, на наличие фасциолеза, изучение технологии получения антигельминтного препарата, отработка методов лечения фасциолеза.

Практическая база

Сельскохозяйственное предприятие «Байсерке-Агро», рынок «Жетысу», кафедра «Биологическая безопасность» и лаборатория «Противопаразитарной биотехнологии» КазНАУ.

2 ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ

2.1 Материал и методы исследований

Большая распространенность фасциолёза среди домашних животных приводит к потерям прироста живой массы, снижению продуктивности животных и выбраковки части туш и ливера.

В этих целях нами была проведена работа по изучению процентной заражённости туш, поступающих на рынок, изучение интенсивности инвазии печени, изучений влияния фасциолеза на качество мясной туши; разработка технологии изготовления таблеток для лечения фасциолеза, разработка лечебно-профилактических мероприятий при фасциолезе.

Исследования были проведены на базе рынка ТОО «Жетісу» города Алматы и на кафедре «Биологической безопасности» КазНАУ.

Процентная заражённость туш – экстенсивность инвазии, была выведена, из статистических данных, полученных из журналов учёта ф. 23 вет, рынка, взятых за три года: 2014, 2015, 2016.

Географическая распространенность была выведена также из вышеуказанных статистических данных.

Интенсивность инвазии исследовали методом полного гельминтологического вскрытия печени.

Изучение изменений в мясе проводили с помощью бактериологических, биохимических исследований и т.д.

Послеубойный осмотр туш и внутренних органов крупного рогатого скота

Послеубойный осмотр туш и внутренних органов крупного рогатого скота устанавливает следующие порядок исследования:

1) Исследование головы.Голову отделяют от туши, язык подрезают у верхушки и с боков так, чтобы он свободно выпадал из подчелюстного пространства. Осматривают и ощупывают губы, язык и слизистую оболочку ротовой полости. Язык фиксируют вилкой и очищают тыльной стороной ножа от кормовых масс и слюны. Если на языке нет видимых патологических изменений, его не разрезают. Вскрывают подчелюстные, заглоточные (средние и боковые), околоушные лимфатические узлы.

Осматривают и разрезают жевательные мышцы пластами на всю ширину, параллельно их поверхности (наружные – двумя разрезами, внутренние - одним) с каждой стороны (на цистицеркоз).

2) Исследование ливера.В состав ливера входят легкие с трахеей, сердце, печень с желчным пузырем, диафрагма и пищевод.

Легкие осматривают снаружи и прощупывают. Вскрывают средостенные краниальные, средние, каудальные и бронхиальные левый, правый, трахеобронхиальный лимфатические узлы. Осматривают трахею, бронхи и паренхиму легких путем продольного разреза каждого легкого по ходу крупных бронхов.

3) Исследование сердца. Вскрывают околосердечную сумку. Осматривают состояние перикарда и эпикарда. Затем по большой кривизне разрезают стенку правого и левого отделов сердца, с одновременным вскрытием желудочков и предсердий. Осматривают миокард, состояние эндокарда, клапанов сердца и крови. Проводят несколько продольных и поперечных несквозных разрезов мышц сердца (на цистицеркоз).

4) Исследование ечени. Печень осматривают и прощупывают с диафрагмальной и висцеральной сторон. В случае приращения диафрагмы к печени последнюю отделяют и осматривают паренхиму на наличие патологических изменений (абсцессы). Разрезают и осматривают портальные лимфатические узлы и делают с левой висцеральной стороны по ходу желчных протоков 2-3 несквозных разреза.

5) Исследование селезенки. Селезенку осматривают, а затем надрезают вдоль и определяют ее внешний вид и консистенцию пульпы.

6) Исследование почек. Почки извлекают из капсулы, осматривают и прощупывают, а в случае обнаружения патологических изменений разрезают, одновременно вскрывают почечные лимфатические узлы.

7) Исследование вымени. Вымя тщательно ощупывают, делают 1-2 глубоких параллельных разрезов. Вскрывают поверхностные паховые лимфатические узлы.

8) Исследование желудка и кишечника. Их осматривают со стороны серозной оболочки. Разрезают несколько желудочных и брыжеечных лимфатических узлов. В случае необходимости вскрывают и осматривают слизистые оболочки.

9) Исследование матки, семенников, мочевого пузыря и поджелудочной железы. Их осматривают, а в случае необходимости – вскрывают.

10) Исследование туши. Тушуосматривают с поверхности и с внутренней стороны, обращая внимание на наличие отеков, кровоизлияний, новообразований, переломов костей и других патологических изменений. Определяют состояние плевры и брюшины. При необходимости осматривают лимфатические узлы с поверхности и на разрезе, а также разрезают отдельные мышцы (шеи, поясничные, анконеусы – на цистицеркоз).

11) Подлежат осмотру следующие основные лимфатические узлы туши: каудальные глубокие шейные, реберно-шейные, подкрыльцовые, первого ребра, собственно подкрыльцовые (подмышечные или подлопаточные), поверхностные шейные, краниальный грудной (парный или непарный), надгрудинные (грудные), межреберные, вентральные средостенные, дорзальные средостенные, лимфатические узлы коленной складки (надколенные), поясничные, наружные подвздошные (округлые подвздошные), медиальный подвздошные, латеральные подвздошные (передние тазовые), глубокие паховые, седалищные.

У телят осматривают также пуповину и вскрывают суставы конечностей (запястные и скакательные).

Послеубойный осмотр туш и внутренних мелкого рогатого скота

Внутренние органы и тушу осматривают так же и как у крупного рогатого скота. Для выявления казеозного лимфаденита осматривают лимфатические узлы поверхностно-шейный и коленной складки.

Метод полного гельминтологического вскрытия (ПГВ)

Измельчаем ткань печени на мелкие кусочки, помещаем в большую ёмкость и заливаем водой. Отстояв некоторое время, сливаем верхнюю часть жидкости. Так повторяем несколько раз. При этом кровянистая жидкость становится светлой, затем удаляют из неё ткани печени и соединяющую ткань, а оставшеюся жидкость 5 –7 минут отстаивают, затем осторожно сливают, после чего осадок отдельными порциями, тщательно исследуют невооруженным глазом или под лупой. Небольшая часть молодых фасциол всплывает вместе с мелкими частицами печени, которые находятся во взвешенном состоянии. Поэтому надосадочную жидкость также необходимо исследовать. Исследование проводим в кювете с чёрным дном или в бактериологической чашке, поставленной на чёрную бумагу. Молодые фасциолы на чёрном фоне дна кювета будут отчётливо различимы, они обычно представляют собой мелкие белые образования овальной или вытянутой формы, длиной от 4 до 36 мм и шириной от 1 до 4 мм.

У крупного рогатого скота интенсивность инвазии считается слабой – 30 фасциол, средней – 50, сильной – 100, очень сильной – 250 и более.

Метод бактериологических исследований

Бактериологическое исследование мяса и мясопродуктов проводят после изучения сопроводительного документа, осмотра упаковки, устанавливания патологоанатомических и органолептических признаков. Бактериологические исследования проводят для исключения или подтверждения сибирской язвы.

Бактериоскопия мазков-отпечатков.

Для исследования готовим мазки – отпечатки из каждой пробы мяса, лимфатических узлов и внутренних органов. Стерильными ножницами вырезаем кусочек мяса 2 – 3 см³ с предварительно обожжённой поверхности пробы мышечной ткани. Срезанными сторонами прикладываем к предметному стеклу. Приготовленные отпечатки высушиваем на воздухе, фиксируем трёхкратным проведением над пламенем горелки и окрашиваем по грамму. Для этого на фиксированные мазки – отпечатки накладываем полоску фильтрованной бумаги, пропитанной 1% спиртовым раствором генцианвиолета, на 2 минуты, после чего отпечатки обрабатываем раствором люголя – 2 минуты, обесцвечиваем йодированным спиртом 2 минуты, затем промываем и высушиваем на воздухе.

Подготовленные мазки – отпечатки микроскопируем при увеличении объектива 90. Просматриваем не менее 10 – 15 полей зрения.

Мясо от здоровых животных свободно от микроорганизмов. +В мясе больных, павших и убитых в агонии животных, могут быть обнаружены возбудители инфекционных заболеваний и высокая общая обсеменённость.

Также мясо считают свежим, если в поле зрения препарата видны единичные (до 10 кл) кокки, палочковидные бактерии и нет следов распада мышечной ткани.

Мясо считают сомнительной свежести, если находят не более 30 кокков или палочковидных бактерий, а также следы распада ткани: ядра мышечных волокон в состоянии распада, лечерченость волокон слабо различима.

Несвежим считают мясо, если выявляют свыше 30 кокков и палочковидных бактерий, наблюдают значительный распад ткани, почти полное исчезновение ядер и отсутствие исчерченности мышечных волокон.

Метод биохимических исследований

Биохимические исследования включают определение рН мяса, постановку качественной реакции на пероксидазу, а говядину исследуют реакцией с нейтральным формалином (формольная реакция).

Определение рН мяса

Для определения рН мяса готовим экстракт в соотношении 1:4, то есть берём 10 г, мелко измельчённого ножницами мяса и 40 мл дистиллированной воды и экстрагируем 15 минут. После этого фильтруем через бумажный фильтр. Дальше исследование проводим на лабораторном рН метре согласно инструкции. РН в светлом мясе от здоровых животных равна 5,9 – 6,5; в сомнительном – 6,6; в негодном – 6,7 – 6,9; при заболеваниях с хроническим течением 6,3 – 6,5; убитых при тяжёлых пат. процессах 6,6 и выше.

Определение амина – аммиачного азота

Для этого берём навеску мяса в 25 г, измельчаем ножницами, затем растираем в ступке с небольшим количеством дистиллированной воды. Полученную кашицу переносим в колбу. Количество воды приготовления кашицы и смыва ступки должно быть 100 мл. Колбу закрываем резиновой пробкой и взбалтываем 3 минуты. Затем отстаиваем 5- 10 минут и снова взбалтываем 2 минуты, после чего содержимое колбы фильтруем через три слоя марли. 40 мл фильтрата помещаем в мерную трубку на 100 мл и для осаждения белков, добавляем вначале 10% раствор алюминиевых квасцов, а затем насыщенный раствор едкого бария. Общий объём осадителей примерно равный или немножко больше объёма мясной вытяжки.

Соотношение насыщенного раствора едкого бария необходимо для нейтрализации нужного количества 10% раствора алюминиевых квасцов, установленным перед исследованием. Для этого берём 10 мл, 10% раствора алюминиевых квасцов добавляем 5 капель 1% раствора фенолфталеина и раствор квасцов оттитровываем насыщенным раствором едкого бария.

Допустим, что для нейтрализации 10, 10% раствора квасцов израсходовано 8 мл едкого бария. При таком соотношении, для осаждения 40 мл фильтрата, необходимо добавить 25 мл, 10 % раствора алюминиевых квасцов и 20 мл насыщенного раствора едкого бария. После добавление осадителей, содержимое колбы доводим диситилированнй водой до метки 100,0 тщательно перемешиваем и даём отстояться 10 минут. Параллейно готовим контрольный опыт без фильтра.

После 10 минутного отстаивания, содержимое колбы фильтруем через бумажный фильтр и по 20 мл фильтрата вносим в конические колбы и добавляем по 0,3 мл индикатора, состоящей из смеси равных объёмов 0,1% спиртовых растворов: нейтрального красного и метиленового голубого и титруем 0,1 н. раствором едкого натра до нейтральной реакции, которую определяем по переходу окраски из фиолетовой в зелёную. Затем добавляем по 10 мл нейтрального формалина и снова титруем 0,1н. Раствором едкого натрия. В процессе титрования растворы исследуемого и контрольного образца, приобретают, вначале ярко-зелёный, а затеи фиолетовый цвет. Переход титруемых растворов из ярко-зелёного в фиолетовый, считают окончательным титрованием.

Содержание амино-амиачного азота в 1мл на 100г мяса (или Х) вычисляем по формуле: Х=8,4*100*100(а-б)*100 / 25*40*20; где

А – количество мл 0,1н. Раствора едкого натрия (NaOH), пошедшего на титрование исследуемого раствора.

Б - количество мл 0,1н. Раствора едкого натра, пошедшего на титрование контрольного раствора.

1,4 количество азота (мл), эквивалентное количеству NaOH в 1мл 0,1н. Раствора. Количество щелочи пошедшее на титрование, эквивалентно количеству аммиачных групп и аммиака. Чем больше активность аммиака, тем хуже.

Реакция с нейтральным формалином (формольная реакция)

Пробу мяса освобождаем от жира и соединительной ткани. Берём 10гр навески и помещаем в ступку, тщательно измельчаем ножницами и прибавляем 10мл физического раствора и 10 капель 0,1н. Раствора едкого натра. Мясо растираем пестиком, полученную кашицу переносим стеклянной палочкой в колбу и нагреваем до кипения, для осаждения белков. Затем колбу охлаждаем водопроводной водой, после чего содержимое её нейтрализуем, 5 капель 5% раствора изавеливой кислоты и фильтруем в пробирку через бумажный фильтр. Если вытяжка мутная, её необходимо вторично фильтровать и центрифунеровать. 2мл вытяжки наливаем в пробирку и добавляем 1мл нейтрального формалина.

Фильтрат слегка помутнел, мясо считается полученым от здорового животного, если фильтрат превращается в полный сгусток или в нём образуются хлопья, мясо считается полученным от убоя больного животного или убитого в состоянии агонии.

Реакция с сернокислой медью

В коническую колбу помещаем 20гр фарша, добавляем 60мл дистиллированной воды, тщательно перемешиваем. Колбу накрываем стеклом и нагреваем в течение 10 минут, в кипящей водяной бане. Затем горячий бульон фильтруем через плотный слой ваты, толщиной 0,5см; в пробирку, помещённую в стакан с холодной водой. Если в фильтрате хлопья белка его, то его нужно снова фильтровать. Далее 2мл профильтрованного бульона наливаем в пробирку и добавляем 3 капли 5% раствора сернистой меди, встряхиваем и выдерживаем 5 минут.

Если образовались хлопья или выпал железно-образный осадок голубого, синего или зелёного цвета – мясо свежее.

Расчёт экономической эффективности проведённых в хозяйствах мероприятий осуществляли согласно методике Шайхаманова.

Экономический ущерб от фасциолеза и экономическую эффективность лечебных и профилактических мероприятий подсчитывали общепринятыми методиками, используя формулы, приведенные в методических указаниях (Н.П.Иванов, Г.С.Шабдарбаева, 2005), а также в учебнике «Организация ветеринарного дела» (Н.Н.Ахметсадыков, Д.М.Хусаинов, Г.С.Шабдарбаева, 2012).

2.2 Результаты исследований

Рынок «Жетысу» находится в городе Алматы. На рынке реализуется различная продукция растительного и животного происхождения, в том числе и мясо птиц. Ветеринарно-санитарная экспертиза продуктов и сырья животного происхождения на рынке проводится лабораторией ветеринарно-санитарной экспертизы, лицензированной в установленном законодательством порядке.

Мясо на рынок поступает с сопроводительной документацией, куда относится ветеринарное свидетельство или справка. Эти документы являются гарантией того, что убою были подвергнуты только здоровые домашние животные, согласно правилам предубойного ветеринарного осмотра убойных животных и послеубойной ветеринарно-санитарной экспертизы туш и органов и их санитарной оценки.

Согласно правилам, запрещается убой на мясо животных:

- больных и подозрительных по заболеванию сибирской язвой, эмфизематозным карбункулом, чумой крупного рогатого скота, чумой верблюдов, бешенством, столбняком, злакокачественным отеком, брадзотом, энтеретоксемией овец, катаральной лихорадкой крупного рогатого скота и овец (африканской чумой свиней ботулизмом, сапом, эпизоотическим лимфангоитом, мелоидозом (ложным сапом), миксоматозом кроликов, классической чумой птиц;

- животных, находящиеся в состоянии агонии, которое устанавливает только ветеринарный специалист;

- привитых вакцинами, а также подвергнутых лечению против сибирской язвы в течение 14 дней после прививок (лечения), привитых инактивированной вакциной против ящура в течение 21 дня, а также животных, которым применяли антибиотики с лечебной и профилактической целью в течение срока, указанного в наставлениях по применению;

- лошадей, не подвергнутых маллеинизации на сап;

- не подлежат к убою животные моложе 14 дней, клинически больные животные, животные с неустановленным диагнозом болезни; больные незаразными болезнями, имеющие повышенную или пониженную температуру тела;

- без проведения предубойного осмотра, заключающегося в измерении температуры, пульса, дыхания и изучении состояния доступных слизистых оболочек, общего состояния животного и присутствия аппетита согласно;

- не соответствующих величинам МДУ (минимально допустимый уровень) в мясе и сроки убоя животных, обработанных ветеринарными препаратами;

В сельских округах предубойный осмотр и послеубойная ветеринарно-санитарная экспертиза осуществляется ветеринарными инспекторами соответствующей территории с последующим клеймением «Предварительный осмотр».

На рынках, в организациях по заготовке (убою) животных, переработке, хранению и реализации продуктов и сырья животного происхождения предубойный осмотр и послеубойная ветеринарно-санитарная экспертиза осуществляется ветеринарными специалистами подразделения производственного контроля организации и лаборатории ветеринарно-санитарной экспертизы.

Результаты предубойного ветеринарного осмотра и термометрии животных регистрируют в журнале установленной формы.

Категорически запрещается выдача ветеринарных справок и свидетельств без данных предубойного исследования животного и послеубойного осмотра туши и внутренних органов, а также без данных трихинеллоскопии (для свинины, медвежатины, мяса нутрий и кабана).

Лаборатория ветеринарно-санитарной экспертизы рынка «Жетісу» находится напротив мясного павильона. Площадь лаборатории 25 м², полы покрыты кафелем, стены выкрашены масляной краской. В лаборатории имеется стол для заведующей, которой является в штате также состоит ветеринарный врач. Имеется стол для биохимических исследований и микроскопии.

Ветеринарно-санитарная экспертиза на рынке «Жетісу» осуществляется согласно правилам, утвержденным приказом Министерства сельского хозяйства Республики Казахстан № 351 от 31 октябрь 2002 года ветеринарно-санитарной экспертизы на рынках, в которых осуществляется торговля продуктами и сырьем животного происхождения, с целью обеспечения их ветеринарно-санитарной безопасности и являются обязательными для юридических и физических лиц, осуществляющих реализацию и ветеринарно-санитарную экспертизу, продуктов и сырья животного происхождения, а также иную предпринимательскую деятельность на территории рынка.

Ветеринарные врачи Лаборатории соответствующего профиля проводят осмотр и отбор проб продуктов и сырья животного происхождения для проведения ветеринарно-санитарной экспертизы.

Ветеринарно-санитарная экспертиза продуктов и сырья животного происхождения в Лаборатории осуществляются в соответствие с Перечнем обязательных и дополнительных исследований, проводимых лабораториями ветеринарно-санитарной экспертизы на рынках согласно Приложению 1.

Ветеринарно-санитарная экспертиза продуктов и сырья животного происхождения осуществляется по стандартным тестам согласно приложению 2 к настоящим Правилам и в соответствии с Правилами предубойного ветеринарного осмотра убойных животных и послеубойной ветеринарно-санитарной экспертизы туш и органов и их ветеринарно-санитарной оценки, утвержденной Министерством сельского хозяйства Республики Казахстан.

Клеймение мяса осуществляется в соответствии с Правилами по клеймению мяса, утвержденными уполномоченным государственным органом в области ветеринарии.

Лаборатория результаты ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов и сырья животного происхождения регистрирует в журнале по утвержденной форме.

Лаборатория по результатам ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов и сырья животного происхождения выдает акт экспертизы ветеринарному инспектору рынка по утвержденной форме.

В случае несоответствия исследуемых продуктов и сырья животного происхождения ветеринарным нормативам ветеринарный инспектор рынка на основании акта экспертизы определяет режим их использования согласно законодательству Республики Казахстан в области ветеринарии.

Повторная ветеринарно-санитарная экспертиза продуктов и сырья животного происхождения проводится в случаях:

- истечения допустимого срока реализации (3 суток) с момента проведения первичной ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов и сырья животного происхождения, кроме случаев соблюдении надлежащих условий хранения на территории рынка;

- хранения продуктов и сырья животного происхождения в холодильниках или в других емкостях, расположенных вне территории рынка;

- реализации юридическими и физическими лицами продуктов и сырья животного происхождения, прошедших ветеринарно-санитарную экспертизу за пределами рынка, и импортированной продукции из других стран.

1.  
   1.  

      1. Изучение географии распространения фасциолёза

Мясо, поступающее на рынок «Жетысу», в основном, поступает из Жамбылского, Илийского, Енбекши-Казахского, Кегенского, Уйгурского, Талгарского районов Алматинской области.

Нами было проведено изучение географической распространенности фасциолёза по вышеуказанным районам за 2016 год. Данные были взяты из журналов и отчётов рынка.

Заражённость фасциолёзом в Алматинской области за 2016 год представлена в таблице 1. Из таблицы 1 видно, что за 2016 год было зарегистрировано 107 туш, поражённых фасциолёзом, в том числе 36 туш КРС, 71 туша овец. Не было выявлено туш конины, пораженных фасциолезом. При этом наибольшая заражённость наблюдалась у туш животных, поступивших на рынок «Жетысу» из Кегенского района Алматинской области. Так за учётный период из Кегенского района поступило 234 туш животных, в том числе 45 туш КРС, 189 туш овец, среди которых заражены фасциолёзом 6 туш КРС, 11 туши овец, что составило 13,3% и 5,82%, соответственно.

Также значительное количество поражённых туш КРС поступило из Енбекши-Казахского (12,4 %), Талгарского (10,29%) и Илийского районов (7,69%).

Таблица 1 - Заражённость фасциолёзом туш животных, поступающих на рынок «Жетысу»

РайоныАлматинской области	Поступило всего туш				Заражённость фасциолами, туш
	КРС	Овцы	Конина	КРС кол-во/%		Овцы кол-во/%	Конина кол-во/%
1. Талгарский	68	76	7	7/10,29		5/6,57	0/0,00
2. Енбекши-Казахский	83	84	6	10/12,04		6/7,14	0/0,00
3. Уйгурский	67	196	13	5/7,64		12/6,12	0/0,00
4. Кегенский	45	189	16	6 /13,31		11/5,82	0/0,00
5. Панфиловский	14	156	9	0/0,00		8/5,12	0/0,00
6. Илийский	78	193	12	6/7,69		12/6,21	0/0,00
7. Карасайский	54	194	8	2/3,70		8/4,12	0/0,00
8. Жамбылский	32	165	9	0/0,00		9/5,45	0/0,00
Итого:	441	1253	80	36/8,16		71/5,66	0/0,00

У овец средняя пораженность варьировала в незначительных отклонениях.

Следующие данные были получены в разрезе районов. Из Талгарского района поступило 144 туш, в том числе 68 туш КРС, 76 туши овец, среди которых 7 туш КРС и 5 туши овец заражены фасциолезом, что составляет 10,29% и 6,57%, соответственно. Из Енбекши-Казахского района поступило 167 туш животных, в том числе 83 туши КРС и 84 туши овец из них 10 туш КРС и 6 туш овец заражены фасциолёзом, что составляет 12,04% и 7,14%, соответственно. Из Уйгурского района поступило 263 туш животных, в том числе 45 туш КРС и 189 туш овец из них 5 туш КРС и 12 туши овец заражены фасциолёзом, что составляет 7,64% и 6,12%, соответственно. Из Кегенского района поступило 234 туш животных, в том числе 37 туш КРС и 43 туш овец из них 6 туши КРС и 11 туш овец заражены фасциолёзом, что составляет 13,3% и 5,82%, соответственно. Из Панфиловского района поступило 170 туш животных, в том числе 14 туш КРС и 156 туш овец из них не было пораженных туш КРС, а 8 туш овец были заражены фасциолёзом, что составляет 0 % и 5,12%, соответственно. Из Илийского района поступило 271 туша животного, в том числе 45 туш КРС и 189 туш овец из них 6 туши КРС и 11 туши овец заражены фасциолёзом, что составляет 7,69% и 6,21%, соответственно. Из Карасайского района поступило 248 туш животных, в том числе 54 туши КРС и 194 туш овец из них 2 туши КРС и 8 туш овец заражены фасциолёзом, что составляет 3,79% и 4,12%, соответственно (рисунок 1). Из Жамбылского района поступило 197 туш животных, соответственно, 32 туши КРС и 165 туш овец, было выявлено 9 туш КРС, пораженных фасциолезом, что составило 5,45 %, туш овец, пораженных фасциолезом, выявлено не было.

Из данных таблицы 1 можно сделать выводы, что наиболее зараженный фасциолёзом крупный рогатый скот, оказался в Кегенском, Енбекши-Казахском, Талгарском и Илийском районах Алматинской области, что связано с географическими особенностями данных регионов, поением животных из естественных водоёмов и широким распространением пресноводных моллюсков – промежуточных хозяев фасциол.

Рисунок 6 - Печень, пораженная фасциолами при исследовании на рынке «Жетысу»

2.2.2 Изучение экстенсивности и интенсивности инвазии фасциолами туш, поступающих на рынок

В связи с широкой распространенностью фасциолёза на территории Алматинской области Республики Казахстан, нами было проведено изучение заражённости туш, поступивших на рынок «Жетысу». Для этого мы использовали статистические данные из журналов и отчётов рынка за предыдущие 3 года. Результаты представлены в таблице 2.

Из данных таблицы 2 следует, что за 2014 год поступило туш: баранины 1236 из них заражённых фасциолёзом оказалось 87 туш, что составило 7,03%; говядины 354 туша, из них заражённых фасциолёзом оказалось 21 туша, что составило 5,93%; конины 53 туши, заражённых фасциолёзом не оказалось.

За 2015 год поступило туш: баранины 1543 из них заражённых фасциолёзом оказалось 123, что составило 7,97%; говядины 446 туши, заражённых фасциолёзом 32 туша, что составило 7,17%; конины 74 туши, заражённых не оказалось.

За 2016 год поступило туш: баранины 1253, заражённых фасциолёзом оказалась 71 туша, что составило 5,66%; говядины 441 туша из них заражённых 36 туш, что составило 8,16%; конины 49 туш, заражённых не оказалось.

Из таблицы 2 видно, что экстенсивность фасциолёзной инвазии за три учётных года (2014, 2015, 2016) была наибольшей у овец в 2015 году, у крупного рогатого скота в 2016 году. По нашему мнению, это связано с влажными климатическими условиями 2014 года, которые благоприятствовали активному размножению пресноводных моллюсков – промежуточных хозяев фасциол, и перевод содержания крупного рогатого скота на пастбищное содержании, вместо промышленного типа.

Таблица 2 - Экстенсивность фасциолезной инвазии туш, поступивших на рынок «Жетысу» за 2014-2016 гг.

Годы	Вид мяса животных	Поступило всего туш	Поражено фасциолёзом туш
			Количество	%
2014	1. Баранина 2. Говядина 3. Конина	1236 354 53	87 21 -	7,2 5,93 -
2015	1. Баранина 2. Говядина 3. Конина	1543 446 74	123 32 -	7,97 7,17 -
2016	1. Баранина 2. Говядина 3. Конина	1253 441 49	71 36 -	5,66 8,16 -

Для изучения интенсивности инвазии было исследовано 5 печеней, поражённых фасциолёзом, из них три говяжьи и две бараньи. Исследование проводили методом полного гельминтологического вскрытия органа. При исследовании печени овец органолептически она выглядит не увеличенной красно-коричнево цвета, желчные ходы увеличены, вступают на поверхности печени в виде желто-серых тяжей, иногда до 2 см. упругой консистенцией на разрезе желчных ходов, при выявлении обнаружены мелкие светло-серые образования овальной или листовидной формы. После проведения полного гельминтологического вскрытия этих печеней, на чёрном фоне было обнаружено: в 1 печени 15 фасциол, во 2 печени 11 фасциол. Что считается слабой интенсивностью инвазии, поскольку обнаружено меньше 20 фасциол.

При исследовании печени крупного рогатого скота органолептически, первая печень была не увеличенной, красно-коричневого цвета, упругой, консистенции на разрезе желчных ходов при выдавливании, в желчных ходах содержится вязкая желто-бурая жидкость, обнаружены мелкие светло-серые образования овальной или листовидной формы. После проведения полного гельминтологического вскрытия, в ней было обнаружено 17 фасциол, что свидетельствует о слабой степени инвазии. При исследовании двух других печеней КРС органолептически, они были увеличены в объёме, края притуплены, ткань багрово-красного цвета, с наличием очаговых гельматом дряблой консистенции. На разрезе при сдавливании выделяется густая масса грязно-жёлтого цвета с наличием паразитов.

После проведения полного гельминтологического вскрытия печеней, на дне чёрного кювета было обнаружено, в одной печени 93 экземпляров фасциол, во второй 86 фасциол, что свидетельствует о сильной интенсивности инвазии, так как их обнаружено около 100 экземпляров.

Санитарная оценка. Пораженные части органов рекомендовали утилизировать. Тушу и непораженные части внутренних органов выпустить без ограничений.

На основании проведённых исследований видно, что в печени МРС интенсивность инвазии фасциолами слабая, поэтому поражённые части зачищаются и утилизируются, а оставшиеся не поражённые участки печеней выпускаются в продажу.

2.2.3 Изучение качественных показателей мяса туш животных, пораженых фасциолёзом

Для определения пригодности мяса от поражённых животных фасциолёзом, провели органолептические исследования 5-ти туш поражённых фасциолёзом, из них 2 туши овец и 3 туши КРС.

Для исследования мы взяли пробы мяса больных фасциолёзом животных массой 150-200 гр. из шейного отдела, в области лопатки и мышц бедра.

Органолептические исследования

Результаты органолептических исследований приведены в таблице 3. Исходя из этих данных видно, что 2 туши МРС и 1 туша КРС (№1,2,3), в которых интенсивность инвазии была слабой имеют следующие показатели: туши красного цвета, хорошо обескровлены, на разрезе мышцы слегка влажные, плотной консистенции, упругие, запах специфический для данного вида животных, места разреза неровно интенсивно пропитаны кровью, поверхностные лимфоузлы (предлопаточные, подкрыльцовые, рёберно-шейные, межрёберные, подгрудные, поясничные, подвздолиные, тазовые, коленкой складки, поверхностные паховые и подкаленные) на разрезе серовато-белого цвета. При варке бульон прозрачного цвета, ароматный.

Две туши КРС (№4 и №5), в которых интенсивность инвазии была сильной, имеют некоторые изменения в мясе: туши тёмно-красного цвета, удовлетворительной степени обескровливание (в кровеносных сосудах находится незначительное количество крови, при разрезе мышц из кровеносных капилляров выступают мелкие капельки крови, на разрезе мышцы влажные, плотной консистенции, упругие, запах специфический, для данного вида животных, место разреза более ровное, менее интенсивно запачкано кровью, шейные кровяные сосуды наполнены кровью, поверхностные лимфатические узлы на разрезе серые с синеватым оттенком. При варке бульон мутноватый и менее ароматный.

Анализируя результаты органолептических исследований можно прийти к заключению, что показатели у туш с номерами 1,2,3 соответствуют показателям свежего доброкачественного мяса, в отличие от туш с номерами 4 и 5, у которых цвет мяса тёмно-красный, степень обескровливания удовлетворительная, место разреза более ровное и интенсивно запачкано кровью, лимфоузлы на разрезе с синеватым оттенком, а бульон мутноватый.

Биохимические исследования

Согласно данным таблицы 4 бактериоскопия мазков-отпечатков образцов проб мышечных тканей, показала, что в тушах с номерами 1, 2 и 3 со слабой интенсивностью инвазии были обнаружены в поле зрения препарата единичные палочки и кокки, тогда как в тушах с номерами 4 и 5, с сильной интенсивностью инвазии, в поле зрения обнаружены до 26 кокков и палочек.

В мясе уровень рН определяли рН метром-150, и он составил в туше №1 – 5,4; №2-5,7; №3-5,8; №4-6,4; №5-6,5. В тушах с номерами 1,2,3 уровень рН находится в пределах допустимой нормы, а в тушах с номерами 4 и 5 уровень рН выше допустимых пределов на 0,1, что говорит об изменениях, в мясе происходящих при сильной интенсивности инвазии.

Реакция на пероксидозу дала от туш с номерами 1,2,3 положительный результат, а от туш с номерами 4 и 5 отрицательный результат, что видимому связано с изменениями, происходящими в мясе при сильной инвазии.

Определение ААА проводили по методу Сафронова, результаты составили в туше №1 – 0,76 мг, №2 – 0,72 мг, №3 – 0,70 мг, №4 – 1,20мг, №5 – 1,22 мг, что при норме до 1,26 мг на 10 мл вытяжки свежего мяса, подтверждает, что мясо во всех пяти тушах доброкачественное, однако в тушах №4 и №5 эти показатели достигают верхних её пределов. Для определения свежести мяса и пригодности для продажи на рынке провели количественное определение ЛЖК и определение первичного распада белков в бульоне, с помощью сернистой меди. Из данных таблицы 4 видно, количество ЛЖК составило в тушах №1–1,84; №2- 1,92; №3–1,86; №4–3,78; №5-3,82. При определении продуктов первичного распада белков, бульон в первых трёх пробах остался прозрачным, то есть реакция признана отрицательной, а в пробах №4 и №5 бульон оказался мутноватым, реакция признана сомнительной. Проведенные исследования показали, что при сильной интенсивности инвазии, в мясе происходит повышение рН (до 6,3), реакция на пероксидозу даёт отрицательный результат, ААА и ЛЖК находятся в пределах нормы, но достигаемой верхних её пределов, реакция с сернистой медью – сомнительная. Несмотря на это, согласно ветеринарному законодательству, такое мясо пригодно к реализации по цене здорового мяса. Считаем, что это нарушает права потребителей. Поэтому департаменту ветеринарного надзора РК следует обратить внимание на это. В Постановлениеи правительства №1205 от 2.10.1998 г. указано, что мясо, имеющее желтушность рекомендуется подвергать обеззараживанию, однако желтушность будет только при очень высокой интенсивности инвазии.

Таблица 3 - Органолептические показатели туши животных, печень которых поражена фасциолёзом

№ туш

Внешний вид

Место зареза

Степень обескровления

Брыжееч. лимфо- узлы на разрезе

Проба варкой

цвет мяса

консистенция

запах

Увлажнённость поверхности разреза

1

2

3

4

5

6

7

8

9

1.

красный

плотная, упругая

специфический

слегка влажная

неровное, интенсивно пропитано кровью

хорошая

серовато-белые

бульон прозрачный, ароматный

2.

красный

плотная, упругая

специфический

слегка влажная

неровное, интенсивно пропитано кровью

хорошая

серовато-белые

бульон прозрачный, ароматный

3.

красный

плотная, упругая

специфический

слегка влажная

неровное, интенсивно пропитано кровью

хорошая

серовато-белые

бульон прозрачный, ароматный

4.

тёмно-красный

плотная, упругая

специфический

влажная

более ровное, менее интенсивно запачкано кровью

удовлетво-рительная

серые с синеватым оттенком

бульон мутноватый, и менее ароматный

5.

тёмно-красный

плотная, упругая

специфический

влажное

более ровное, менее интенсивно запачкано кровью

удовлетво-рительная

серые с синеватым оттенком

бульон мутноватый, и менее ароматный

Таблица 4 - Биохимические и бактериологические показатели мяса животных, печень которых была поражена фасциолёзом

№ туш	Бактериоскопия мазков-отпечатков	рН	Реакция на пероксидозу	А.А.А (мг)	ЛЖК	Реакция с сернистой медью
1	2	3	4	5	6	7
1.	Обнаружены единичные кокки и палочки	5,4	положительная	0,76	1,84	Бульон прозрачный
2.	Обнаружены единичные кокки и палочки	5,7	положительная	0,72	1,92	Бульон прозрачный
3.	Обнаружены единичные кокки и палочки	5,8	положительная	0,70	1,86	Бульон прозрачный
4.	Обнаружено 20-30 кокков и палочек	6,4	отрицательная	1,22	3,78	Бульон мутноватый
5.	Обнаружено 30-35 кокков и палочек	6,5	отрицательная	1,24	3,82	Бульон мутноватый

1.  
   1.  

      1. Изучение технологии получения антгельминтных таблеток «Альбен-К» на основе альбендозола

Работу проводили на базе завода по производству химиотерапевтических препаратов ТОО НПП «Антиген». Нами был изучен процесс изготовления таблеток, в котором мы принимали непосредственное участие. Сущность технологии заключалась в следующем:

Таблетки – твердая дозированная лекарственная форма, получаемая прессованием лекарственных веществ, смеси лекарственных и вспомогательных веществ или формированием специальных масс и предназначенная для внутреннего, наружного, сублингвального или парентерального применений.

Наполнители (разбавители) – это вещества, используемые для придания таблетке определенной массы в тех случаях, когда лекарственное вещество входит в ее состав в небольшой дозировке (обычно 0,01-0,001 г). В качестве наполнителей применяют сахарозу, лактозу, глюкозу, натрия хлорид, глицин, кальция гидрофосфат, крахмал, магния карбонат основной, кальция сульфат и некоторые другие вещества. Наполнители, обладающие хорошей сыпучестью и прессуемостью, используются для прямого прессования. Они не являются инертными формообразователями, а в значительной степени определяют скорость высвобождения, стабильность лекарственного вещества.

Вспомогательные вещества придают таблетируемой массе необходимые технологические свойства, хорошую дозируемость и прессуемость и обеспечивают получение таблеток требуемого качества. Все вспомогательные вещества, используемые в производстве таблеток, в зависимости от назначения подразделяются на следующие группы: разрыхлители, связывающие, вещества, способствующие скольжению, красители.

Вещества, способствующие скольжению предотвращают налипание таблетируемых масс на пуансоны и стенки отверстия матрицы при прессовании. Эти вещества улучшают однородность механических и физических свойств. Эти вещества делят на три условные группы: обеспечивающие скольжение, смазывающие и препятствующие прилипанию. Они обеспечивают равномерное истечение таблетируемой массы из бункера в матрицу, что гарантирует точность и постоянство дозировки лекарственного вещества. Непосредственным следствием хорошей текучести материала является бесперебойная работа таблеточной машины и высокое качество таблеток.

Наиболее распространены три технологические схемы получения таблеток: с применением влажного или сухого гранулирования и прямое прессование (схема 1).

Для предварительного измельчения лекарственных веществ применяют молотковые мельницы, до мелкого и тонкого – дисмембраторы и шаровые мельницы. Составляющие таблеточную смесь лекарственные и вспомогательные вещества тщательно смешивают, используя смесители лопастного типа. Для улучшения таблетирования вместо порошкообразных веществ используют гранулы.

Гранулирование – процесс превращения порошкообразного материала в частицы (зерна) определенной величины. Оно позволяет предотвратить расслаивание многокомпонентных таблетируемых масс, улучшить сыпучесть (текучесть) порошков и их смесей, обеспечить равномерную скорость поступления их в матрицу таблеточной машины и большую точность дозирования и равномерное распределение активного компонента, а следовательно, большую гарантию лечебных свойств каждой таблетки.

Гранулирование выполняют следующими способами: влажное – продавливанием влажных масс, во взвешенном слое с последующим распылительным высушиванием; сухое компактирование.

Прессование можно определить как процесс образования таблеток из гранулированного или порошкообразного материала под действием давления. Прессование на таблеточных машинах осуществляется пресс-инструментом, состоящим из матрицы и двух пуансонов. Матрица представляет собой стальную деталь цилиндрической формы со сквозным отверстием (3-25 мм). Пуансоны – это цилиндрические стержни (поршни) из хромированной стали, которые входят в отверстия матрицы сверху и снизу и обеспечивают прессование таблетки под действием давления.

По разработанной технологии порошок альбендазола смешивают с лактозой и крахмалом при соотношениях масс,%: 20: 50: 20, подвергают смесь влажной грануляции, сушке, сухой грануляции, опудривают смесью крахмала, кальция стеарата, аэросила при соотношениях, мас.% 6: 2: 2, прессуют гранулы и таблетки, и затем сушат полученные таблетки при 105-110 С. Альбендазол в ветеринарии применяют для дегельминтизации сельскохозяйственных животных при гельминтозах, в частности, при трематодозах. «Альбен-К» применяют при остром фасциолёзе в дозе 6 – 8 мг/кг по ДВ, при хроническом течении 4 – 4 мг/кг. Применяют, однократно соблюдая дозировку. Для альбендазола характерна слабая растворимость в воде, низкая токсичность, сравнительно высокая терапевтическая эффективность (рисунок 2).

Рисунок 7 – Препарат «Альбен-К» производства НПП «Антиген»

Лактоза, крахмал – углеводы из группы сахаридов, являются наполнителями.

При производстве препарата «Альбен-К», расчетное количество альбендазола, сахара молочного и крахмала картофельного просеивают через капроновое сито № 11, затем тщательно все перемешивают и смесь увлажняют 5 %-ным раствором крахмального клейстера. Увлажненную массу пропускают через гранулятор с диаметром отверстий в барабане 3мм. Полученный влажный гранулят сушат при температуре 70-80С до остаточной влажности 3-4 %. Затем проводят сухую грануляцию на грануляторе с диаметром отверстий барабана 2 мм.

Сухой гранулят опудривают смесью крахмала картофельного, кальция стеарата и аэросила, предварительно просеянных через капроновое сито № 32.

Затем проводят таблетирование на роторном прессе РТМ-41, пуансоны плоские под фаску и риску; диаметр 21 мм. Полученные таблетки сушат при температуре 105-110С. Средняя масса таблеток 1,0 г.

Полученные таблетки укупоривают блистерные упаковки по 5 или 10 штук. Сохраняют препарат при температуре 10-20С, в сухом месте. Срок годности 12 месяцев. На всех стадиях изготовления препарата осуществляется необходимый контроль (рисунок 2).

Схема технологии изготовления таблеток «Альбен-К»

Исходный материал

Отвешивание-отмеривание

Измельчение

Просеивание

	Смешивание порошков
	Прессование

1.  
   1.  

      1. Организация ветеринарных мероприятий по ликвидации фасциолёза в хозяйстве

Один из поставщиков мяса с поражением печени фасциолёзом было частное крестьянское хозяйство, куда нами был сделан выезд, с целью изучения эпизоотологической ситуации по фасциолёзу.

После выезда в указанное хозяйство по разрешению областного комитета ветеринарного надзора нами было установлено, что хозяйство животноводческого направления. В крестьянском хозяйстве 120 голов крупного рогатого скота.

Нами были изучены, совместно с ветеринарным врачом обслуживающим крестьянское хозяйство, были проведены осмотр территории хозяйства, помещения, пастбища, места водопоя, условия содержания скота – пастбищно-выгульное.

С целью уточнения эпизоотической ситуации по фасцилёзу нами были взяты пробы фекалий, для гельминтокапрологического исследования.

Для ликвидации фасцилёза в хозяйстве нами были проведены следующие мероприятия: гельминтологические исследования, дегельминтизация дефинитивных хозяев возбудителя и уничтожение промежуточных хозяев – моллюсков.

Для гельминтологического исследования взяты пробы фекалий. Исследование проводили по методу последовательного промывания. Небольшую порцию смешали с десятикратным количеством воды. Смесь профильтровали через марлю, отстаивали её в течение 5 минут. После этого слой жидкости сливаем, а к осадку добавляем чистой воды, отстаиваем 5 минут. Промываем до тех пор, пока верхний слой жидкости не станет прозрачным, затем жидкость сливаем, а осадок исследуем под микроскопом на наличие фасциолёза.

В результате исследований были обнаружены яйца (в 1 грамме фекалия – одно яйцо) слабая интенсивность инвазии. Яйца фасциол крупные, размером 0,130—0,140 х 0,7—0,09 мм, овальной формы с жёлто – коричневой оболочкой, ясно заметной крышкой на одном конце и бугорочком на другом.

С целью уничтожения эпизоотического процесса по фасциолёзу, животных поставили на стойловое содержание и провели дегельминтизацию. Для проведения дегельминтизации использовали препарат Альбен-К в дозе 0,004 г/кг. Препарат задавали животным вместе с кормом.

Через 15 дней провели контрольные гельминтологические исследования, результат которых показал отсутствие в исследуемом материале возбудителя и его яиц. Результаты приведены в таблице 5.

Таблица 5 – Результаты овоскопии фекалий телят при применении Альбена-К

Вид животных	Количество животных	Найдено яиц трематод
		до обработки		после обработки
Ягнята	10	7		-
Телята	10	5		-
Рисунок 8 - Яйца фасциол

Далее были организованы мероприятия по борьбе с моллюсками, использовали химический метод. Для этого приготовили раствор медного купороса 1:5000. Из расчёта 10 литров на 1м²., а затем опрыскали пораженную территорию из гидропульта.

С целью прогнозирования возникновения фасциолеза было предложено учитывать площадь заливных сенокосов и пастбищ, и наличие овцепоголовья или крупного рогатого скота на данных территориях. При совпадении двух этих факторов, рекомендуется проводить профилактическую дегельментизацию животных.

Для профилактики и ликвидации разработали и предложили проводить следующие мероприятия:

1) Выявление заливных лугов, пастбищ, сенокосов

2) Борьба с промежуточными хозяевами фасциолёза – моллюсками.

3) Перепашка земель и засевание их культурными растениями.

4) Биологический метод – разведение домашний птицы: гуси, утки, куры.

5) Своевременная дегельминтизация дефинитивных хозяев препаратом «Альбен-К», два раза в год, после постановки на стойловое содержание через месяц, и через три месяца (октябрь, февраль).

6) Своевременная уборка и биотермия навоза в специальных навозохранилищах.

7) Для водопоя использовать хорошо освещаемые места, свободные от кустарников, с твёрдым покрытием и проточной водой.

8) Через каждые два месяца менять места выпаса.

9) Проводить разъяснительные работы, среди работников.

10) Организовать стойлово-выгульное содержание молодняка.

2.2.6 Экономический ущерб и экономическая эффективность ветеринарных мероприятий при фасциолёзе

1. Экономический ущерб от браковки поражённых органов.

У=М_вп Ц + З_у -В_ф , где

М_вп – количество выбракованной продукции (кг)

Ц – закупочная цена

З_у – затраты на утилизацию(тг)

В_ф- фактическая выручка от реализации

У=35 250+500-0=8000 тенге

2. Общий экономический ущерб.

У_общ=8000 тенге

3. Коэффициент заболеваемости по фасциолёзу.

К_з=Б/м, где

Б - число поражённых туш

М – число обследованных туш

К_з=5/40=0,125

4. Коэффициент ущерба на 1 заболевшее животное.

К_у= У_общ/Б, где

У_общ - экономический ущерб

Б – число поражённых туш

К_у=8000/5=1600 тенге

5. Ветеринарные затраты.

Наименование препарата	Единица измерения	Цена за единицу	Количество	Сумма (тенге)
1. «Альбен-К» 2. Медный купорос	Доза кг	50 60	200 100	10 000 6 000
Итого					16 000

Затраты на заработную плату:

Должность	Оклад (тенге)	За 1 день (тенге)	За 5 дней (тенге)
1.Ветврач	15 000	600	3 000
2.Вет санитар	7 500	300	1 500
3.Вет техник	7 500	300	1 500
Итого:	20 000	100	6 000

Всего ветеринарных затрат Вз = 22 000 тенге

6. Предотвращенный ущерб:

П_у=М₀*К_з*К_у-У₀, где

М₀ – количество восприимчивых животных

К_з - коофициент заболеваемости

К_у – Коофициент ущерба

У₀ – Общий ущерб

П_у=200*0,125*1 600-8 000=32 000 тенге

7.Экономический эффект:

Э_ф=П_у – Зв, где

П_у – предотвращённый ущерб

Зв - ветеринарные затраты

Э_ф=32 000-22 000=10 000 тенге

8. Экономическая эффективность ветеринарных мероприятий на 1 тенге затрат:

Э_т =Э_ф/ Зв, где

Э_ф – экономический эффект

Зв - ветеринарные затраты

Э_т=10 000/22 000 = 0,45тенге

Экономический эффект составил 10 000 тенге

Экономическая эффективность ветеринарных мероприятий на 1 тенге затрат составляет 0,45 тенге.

1. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Организация ветеринарного надзора на рынках и лабораториях ветеринарно-санитарной экспертизы мяса, молока и других пищевых продуктов осуществляется в соответствии с законом Республики Казахстан «О Ветеринарии» и положением о Государственном ветеринарном надзоре в Республике Казахстан.

Наши исследования показали, что на рынке ««Жетысу»» строго соблюдаются требования законов и положений о ветеринарно-санитарном надзоре. Для осуществления ветеринарно-санитарной экспертизы и продуктов различного происхождения, оборудованы лаборатории ветеринарно-санитарной экспертизы и их отделы, современными специальными приборами, инструментами, оборудованием и другим необходимым имуществом. В каждой лаборатории ветеринарно-санитарной экспертизы установлены распорядки дня в соответствии с режимом работы рынков, определены должностные инструкции каждого работника. В целях совершенствования организации деятельности лаборатории ветеринарно-санитарной экспертизы, уточнение их задач в современных условиях, законодательного регулирования коммерческой ветеринарной деятельности в лабораториях, разработано новое положение о лабораториях ветеринарно-санитарной экспертизы, которое утверждено главным управлением ветеринарного комитета министров Республики Казахстан.

При убое животных рекомендуется проводить тщательную ветеринарно-санитарную экспертизу печени, при этом особое внимание надо обратить на поражённость её фасциолёзом. Проводить выбраковку печени, поражённую фасциолёзом, более 2/3 органа проводить достаточно легко, её направляют на утилизацию. Непоражённые части органов и тушу без изменения выпускают, без ограничения. При незначительной инвазии достаточно провести 2 – 3 разреза, как вдоль, так и поперёк желчных протоков и провести по перчатке или ладони, фасциолы сразу заметны. Если же в данном случае фасциолы не будут обнаружены, то надо прибегать к обязательному полному гельминтологическому исследованию печени. Ткань печени измельчать в сосуде с водой и многократно промывать до просветления жидкости. Затем крупные кусочки печени удалить, а в осадке подсчитать количество фасциол.

Вода после промывки туш, органов и т.д., должна пропускаться через фильтры – отстойники и в дальнейшем обеззараживаться.

Целесообразно проводить ветеринарно-просветительную работу по разъяснению сущности заболевания, приносимого ущерба, организации мер профилактики фасциолёза животных.

В настоящее время растёт численность хозяйств с большой концентрацией животных на ограниченных площадях. Из года в год увеличивается количество отходов животноводческих предприятий, территорий, комплексов и ферм, бывает сильно загрязнена отходами (яйца, личинки гельминтов), пылью, грибами и д.р. Это приводит к загрязнению окружающей среды.

С целью предотвращения загрязнения окружающей среды инвазионными началами превосходной важности является задача по уборке, хранению и обеззараживанию навоза. В каждом хозяйстве необходимо иметь навозохранилище. Оно должно быть огорожено и приспособлено для биотермического обеззараживания, не рекомендуется вывозить навоз на поля.

При борьбе с промежуточными хозяевами гельминтов путём сжигания на пастбищах растительности, сухой, не нашлось до сих пор широкого применения. Установили, сто сжигание осуществимо только при наличии густого растительного покрова. В этом случае наблюдается гибель моллюсков до 100%. При наличии редкого растительного покрова сжигание не достигает желаемых успехов. В этом случае гибель моллюсков не превышает 30 – 40%.

Особое место в борьбе с промежуточным хозяином отводится химическим методам так, опыление участка медным купоросом в форме водного раствора 1:5000 из расчёта 10 литров на 1м² позволило уничтожить всех наземных моллюсков.

Влияние условий содержания животных на инвазию. Рекомендуется в дневное время выпасать животных на культурных пастбищах, а в основное время содержать на ферме. В случае недостаточного количества выпасов неблагополучные пастбища используют в первую очередь под пастьбу взрослого поголовья, молодых стараются пасти на возвышении склона.

Внедрение в практику предложенных мероприятий по оздоровлению животных от фасциолёза, позволит значительно сократить ущерб, причиняемый этим широко распространенным заболеванием – фасциолёз.

Методика экономической оценки деятельности ветеринарных учреждений, сводится к оценке ущерба, причиняемого больными животными, анализу затрат на содержание ветеринарных, животноводческих учреждений и определению их экономической эффективности.

3.1 Выводы

1 При ветеринарно-санитарной экспертизе туш убойных животных на рынке ««Жетысу»» выявлено среди туш баранов 71 случай поражения фасциолами, что составило – 5,66%; среди туш КРС – 36 или 8,16%.

1. Высокая интенсивность фасциолёзной инвазии приводит к ухудшению качественных показателей мяса.

2. Изучена технология получения таблеток «Альбен-К» для борьбы с фасциолезом крупного рогатого скота.

4 Испытание таблеток «Альбен-К» при фасциолезе показало их высокую эффективность, которая составила 100,0%.

5 Разработаны меры профилактики и борьбы с возбудителем и его промежуточным хозяином, в основу которых положены общехозяйственные и специальные мероприятия.

6 Предложен для профилактической и лечебной дегельминтизации антигельминтик «Альбен-К», имеющий 100% эффективность.

3.2 Практические предложения

1 Для дегельминтизации животных предлагаем отечественный антигельминтный препарат «Альбен-К».

2 Для ликвидации фасциолёза в хозяйстве предлагаем проводить следующие мероприятия:

а) своевременная дегельминтизация дефинитивных хозяев (2 раза в год: после постановки животных на стойловое содержание, через месяц, затем через 3 месяца (октябрь, февраль);

б) в качестве антгельминтного препарата использовать «Альбен К»;

в) борьба с промежуточными хозяевами: перепашка земель и засевание их культурными растениями, химический метод – использование медного раствора купороса (1:5000) 2 раза в год (май, июль) дляопрыскивания пастбищ, биологический метод – разведение домашней птицы: куры, утки;

г) своевременная уборка и биотермия навоза;

д) для водопоя животных использовать хорошо освещаемые места, свободные от кустарников и оборудованные твёрдым покрытием;

е) в пастбищный период животных переводить на участки травосеяния;

ж) не использовать водоёмы со стоячей водой.

4 СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1 Абрамов В.Е. Теоретическое обоснование создания новых препаратных форм альбендазола и клозантела для борьбы с эндо- и эктопаразитами сельскохозяйственных животных: автореф. дисс. . д-ра вет. наук / В.Е. Абрамов. СПб., 2000. - 46 с.

2 Анакина Ю. Борьба с фасциолезом жвачных / Ю. Анакина // Хозяин. — 1995.-№ 1.-С. 9-10.

3 Архипов И.А. Выбор антгельминтиков для лечения животных / И.А. Архипов, М.Б. Мусаев // Ветеринария. 2004. - № 2. - С. 28-33.

4 Березкина C.B. Фасциолез и меры борьбы с ним / C.B. Березкина, Т.Д. Черкасова, В.А. Юркив // Зооиндустрия. 2004. — № 2. — С. 16.

5 Лукин А.К. К вопросу профилактики новых очагов фасциолеза сельскохозяйственных животных / А.К. Лукин // Тр. Саратовской НИВС, 1978. -Т. 12.- С. 81-84.

6 Касымбеков Б. Основные гельминтозы жвачных животных в Киргизии и меры борьбы с ними: автореф. дисс. . д-ра вет. наук / Б. Касымбеков. — М., 1990.-47 с.

7 Сорокина И.Б. Эффективность новых отечественных препаратов при фасциолезе овец / И.Б. Сорокина, A.B. Шорыгин, А.Ю. Большакова // Инвазионные болезни сельскохозяйственных животных. Иваново, 1991. — С. 70-73.

8 Вильявисенсио А. Эпизоотологический анализ фасциолеза (F. hepatica L. 1758) в Эквадоре: автореф. дисс... канд. вет. наук / А. Вильявисенсио. — М., 2006. 15 с.

9 Сафиуллин Р.Т. Распространение и экономический ущерб от основных гельминтозов жвачных животных / Р.Т. Сафиуллин^ // Ветеринария. — 1997.-№6.-С. 28-32.

10 Гришин В.В. Альбен решение проблемы с паразитозами продуктивных животных и птицы / В.В. Гришин, А.П. Сухарева // Зооиндустрия. — 2005. - № 7. — С. 13.

11 Сорокина Н.П. Эпизоотологический анализ биотического потенциала фасциолы (F. hepatica L. 1758) в Центральном регионе России: автореф. дисс. канд. вет. наук / Н.П. Сорокина. -М., 2004. 15 с.

12 Бердников П.П. Зависимость распространения инвазий от условий пастбищного содержания крупного рогатого скота / П.П. Бердников // Сборник трудов. — Благовещенск, 1980. — С. 26-28.

13 Самобочий A.B. Эпизоотологическая характеристика гельминтозов крупного рогатого скота и меры борьбы с ним на юге западной Сибири: дисс. канд. вет. наук / A.B. Самобочий. Барнаул, 2000. — 195 с.

14 Марченко В.А. Эпизоотическая ситуация по фасциолезу крупного рогат того скота в Республике Алтай / В.А. Марченко, Ё.А., Васильева.// Материалы Докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с: паразитарными болезнями». М., 2007. - С. 207-210.

15 Масарновский А.Г. Эпизоотология фасциолеза и меры борьбы с ним в Иркутской области: дисс... канд. вет. наук / А.Г. Масарновский. М., 1971.-181 с.

16 Эпизоотология фасциолеза крупного рогатого скота в Тюменской области / F.C. Сивков и др. // Ветеринария. 2000. - № 2. - С. 28-31.

17 Атаев A.M. Экологические основы терапии и профилактики фасциолезаживотных / A.M. Атаев // Ветеринария. 1994. - № 11. — С. 28-31.

18 Малкандуева Л.И.Эколого-биологическая оценка фасциологенных очагов в пограничных биогеоценозах и усовершенствование методов наступательной профилактики инвазии: автореф. дисс. . канд. вет. наук / Л.И. Малкандуева. Махачкала, 2004. - 22 с.

19 Убираев С.П. Гельминтозы как социально-экономическая проблема в условиях антропрессии и пути ее решения в юго-восточном регионе Российской Федерации: автореф. дисс. . д-ра вет. наук / С.П. Убираев. — М., 1998.-42 с.

20 Хицова Л.Н. К эпизоотологии фасциолеза животных в центральном Черноземье / Л.Н. Хицова, И.Д. Шелякин // Материалы науч. конф. — Воронеж, 1996.-С. 222-223.

21 Ромашов В.А. Ассоциативные трематоды у диких копытных животных центрального Черноземья России / В.А. Ромашов, И.Д. Шелякин // Материалы науч. конф. — Воронеж, 1996. С. 216-217.

22 Карелин С.Т. К вопросу о прогнозировании фасциолеза крупного рогатого скота / С.Т. Карелин, О.М. Швец // Тезисы докладов Международной конференции, посвященной 80-летию MB А им. К.И, Скрябина. — М.: МВА им. К.И. Скрябина, 1999. С. 276-277.

23 Гурьева С.С. Мониторинг очагов фасциолеза на пастбищах курской1 области / С.С. Гурьева // Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». — М., 2007. — С. 9697.

24 Волкова З.М. Эпизоотология фасциолеза овец в Московской области: автореф. дисс. . канд. вет. наук/З.М. Волкова. — М., 1955. — 16 с.

25 Петроченко В.И. Профилактика фасциолеза / В.И. Петроченко, Н.Г. Шигина // Ветеринария. 1980. - № 6. - С. 43-44.

26 Хромов К.А. Фасциолез и стронгилятозы желудочно-кишечного тракта крупного рогатого скота в условиях Центральной зоны России и поиск средств борьбы с ними: дисс. . канд. вет. наук / К.А. Хромов. -М., 2005. 163 с.

27 Мамлеева А.З. Основные трематодозы КРС / А.З. Мамлеева // Практик. — 2005.-№3-4.-С. 34-39.

28 Онуфриенко М.Э. Возрастная и сезонная динамика фасциолеза крупного рогатого скота/ М.Э. Онуфриенко // Ветеринария. 2002. - № 12. - С. 2831.

29 Кольцов И.В. Фасциолез крупного рогатого скота в северо-западном регионе Российской Федерации (эпизоотология, терапия, профилактика): автореф. дисс... канд. вет. наук / И.В. Кольцов. СПб., 2002. - 18 с.

29 Опыт борьбы с фасциолезом крупного рогатого скота в хозяйствах Ивановской области / Ю.Ф. Петров и др. // Сборник научных трудов. — М., 1986.-С. 28-33.

30 Петров Ю.Ф. Паразитоценозы и ассоциативные болезни сельскохозяйственных животных / Ю.Ф. Петров. — JL: Агропромиздат, 1988. — 176 с.

31 Волков А.Х. Гельминтозы крупного рогатого скота республики Татарстан / А.Х. Волков, Р.Т. Сафиуллин // Ветеринария. 2000. - № 1. с. 30-31.

32 Латыпов Д.Г. Гельминтозы крупного рогатого скота в Республике Татарстан (эпизоотология, диагностики и терапия): автореф. дисс. .доктора вет. наук / Д.Г. Латыпов. М., 2010. - 42 с.

33 Филиппов В.В. Специфика гельминтов, определяющая особенности иммунологических процессов /В.В. Филиппов // Труды ВИЭВ. Иммунитет сельскохозяйственных животных. М.: ВИЭВ, 1989. — Т. 67. - С. 22-27.

34 Нурхаметов Х.Г. Компенсаторно-восстановительные процессы в организме овец при фасциолезе после дегельминтизации и стимуляции: дисс... доктора вет. наук / Х.Г. Нурхаметов. Уфа, 1989. - 476 с.

35 Ершов B.C. Проблемы иммунитета и аллергии при гельминтозах / B.C. Ершов // Проблемы ветеринарной иммунологии. — М., 1985. С. 17-22.

36 3ильбер JI.A. Основы иммунологии / JI.A. Зильбер. — М.: Медицина, 1958. 600 с.

37 Озерецовская H.H. Химиотерапия паразитарных болезней и иммуноде-прессии / H.H. Озерецковская // Мед. паразитол. и паразитарн. болезни. — 1987.-№5.-С. 8-12.

38 Dineen J.K. Immunological aspects of parasitism / J.K. Dineen // London: Nature. 1963.-P. 268-269.

39 Damian R.T. Molecular mimicry: antigen sharing by parasite and host and its consequences / R.T. Damian // II Amer. Nat. 1964. - Vol. 98. - P. 129-149.

40 Ковальчук Л.В. Иммунодефициты у человека: возможные механизмы нарушения иммунитета и их коррекция / Л.В. Ковальчук // Иммунология. — 1980.-№ 1.-С. 4-7.

41 Карпуть И.М. Влияние витамина С и антибиотиков на иммуногенез / И.М. Карпуть // Ветеринария. 1974. - № 11. - С. 59.

42 Даугалиева Э.Х. Иммунный статус и пути его коррекции при гельминтозах / Э.Х. Даугалиева // Труды ВИЭВ. 1989. - Том 67. - С. 78-87.

43 Мамыкова О.И. Влияние антгельминтиков на иммунобиологический статуе животных / О.И. Мамыкова // Труды ВИЭВ. 1988. - Том 66. - С. 82- 86.

44 Озерецовская H.H. Химиотерапия паразитарных болезней и иммунодепрессии / H.H. Озерецковская // Мед. паразитол. и паразитарн. болезни. — 1987.-№5.-С. 8-12.

45 Филиппов В.В. Фасциолез и меры его профилактики / В.В. Филиппов. — М., 1981.-35 с.

46 Азимов Д.А. Ориентобильхарциоз и фасциолез жвачных (эпизоотология и меры борьбы) / Д.А. Азимов, Е.Ш. Шакиев, М.К. Кожабаев // Ветеринария. 1991. -№ 7. - С. 39-41.

47 Гариев Б.Г. Борьба с фасциолезом» овец / Б.Г. Гариев // Ветеринария. — 1984.-№8.-С. 42-44:

48 Сапунов А .Я. Фасциолез у овцематок на Кубани /А.Я. Сапунов, Б.Л. Гаркави, Ю.И. Щербаха // Бюлл. Всесоюз. ин-та гельминтол. 1986. - Вып.42. С. 86-87.

49 Истамов И.И. Изучение белковых фракций сыворотки крови при некоторых инвазионных заболеваниях: автореф. дисс. . канд. биол. наук / И.И. Истамов. Самарканд, 1970. - 21 с.

50 Демидов Н.В. Фасциолез животных / Н.В. Демидов. М.: Колос. — 1965. - 207 с.

51 Шакиев Е.Ш; Мероприятия при фасциолезе / Е.Ш. Шакиев, А.М: Солдатченко // Ветеринария. 1984. - № 10. - С. 36-38.

52 Хрусталева Л.И. Возможные отдаленные последствия применения фасциолоцидных антгельминтиков: автореф. дисс. . канд. вет. наук / Л.И. Хрусталева. М., 1985. - 24 с.

53 Мамержанов С.И. Оптимальная схема дегельминтизации гексихолом при субклиническом течении фасциолеза у лактирующих коров / С.И. Мамержанов, Л.Е. Енин // Бюлл. Всесоюз. ин-та гельминтол. 1986. - Вып. 44.-С. 51-54.

54 Архипов И.А. Выбор антгельминтиков для лечения животных / И.А. Архипов, М.Б. Мусаев // Ветеринария. 2004. - № 2. - С. 28-33.

55 Кузьмичев В.В. Динамика формирования паразитоценозов в организмеживотных при инвазии их фасциолами / В.В. Кузьмичев // Материалы научно-произв. конф. Санкт-Петербург, 1998. - С. 117-118.

56 Чарыева Е.П. Информационный метод анализа изменений в печени крыс после применения гексихола С при экспериментальном фасциолезе // Бюлл. Всесоюз. ин-та гельминтол. 1988. - Вып. 49. — С. 7779.

57 Дорошина М.В. Параметры острой и хронической токсичности гексихола С / М.В. Дорошина // Бюлл. Всесоюз. ин-та гельминтол. 1989. - Вып. 52. -С. 18-21.

58 Опыт дегельминтизации домашних животных при фасциолезе / И.Д. Ше-лякин и др. // Материалы науч. конф. — Воронеж, 1996. — С. 228.

59 Глухова М.В. Профилактика и лечение осложнений после дегельминтизации коров гексихолом и политремом: автореф. дисс. . канд. вет. наук / М.В. Глухова. М;, 1994. - 22 с.

60 Глухова М.В. Применение селенита натрия при осложнениях у коров после дегельминтизации против фасциолеза / MiB. Глухова, Т.П. Веселова // Ветеринария. 1995. - № 7. - С. 36-37.

61 Биттиров A.M. Формирование гельминтологических комплексов животных на центральном Кавказе и способы регуляции численности гельминтов: автореф. дисс. . д-ра биол. наук / A.M. Биттиров. — М., 1999. — 42 с.

62 Шемяков Д.Н. Антгельминтная эффективность тетраксихола при фасциолезе и влияние его на организм и продуктивность жвачных: дисс. . канд. вет. наук / Д.Н. Шемяков. Москва, 1999. - 154 с.

63 Horak J.G. The anthelmintic efficacy of bithionole against Paramphistomum microbothricum, Fasciola spp. and Schistosoma mattheei / J.G. Horak // J. S. Aft. Vet. Med. Ass. 1965. -V. 36. -N 4. - P. 561-566.

64 Журавец А.К. Триногин и битионол эффективные антигельминтики при фасциолезе овец / А.К. Журавец // Ветеринария. — 1968. — № 4 - С. 40-50.

65 Ткач В.И. Основные механизмы двигательной активности FASCIOLA HEPATICA L., 1758 и влияние на них некоторых антгельминтиков: автореф. дисс. . канд. биол. наук/В.И. Ткач. Кишинев, 1968. — 201с.

66 Аюпов Х.В. Битионол высокоэффективный антигельминтик / Х.В. Аю-пов, Г.З. Хазиев // Ветеринария. - 1974. - № 4. - С. 84-85.

67 Сафиуллин Р.Т. Эффективность левацида при фасциолезе коров и овец / Р.Т. Сафиуллин, A.C. Вечеркин // Материалы докл. науч. конф. «Актуальные вопросы теоретической и прикладной трематодологии и цестодологии». — М. — 1997. — С. 140-141.

68 Райхер Ш.Г. Изыскание новых фасциолоцидных препаратов и изучение терапевтической эффективности сульфена и гексида при фасциолезе крупного рогатого скота: автореф. дисс. . канд. вет, наук / Ш.Г. Райхер. -М., 1974.-24 с.

69 Dickerson S. A chemotherapeutic agent for all stages of lives fluke disease in sheep / S. Dickerson, M. Hareenist, P.A. Kingsbury // Brit. Vet. J. 1971. - V. 127.-N 8.-P. 85-86.

70 Wood J.C. The use diamphenetide against Fasciola infections in sheep / J.C. Wood // Irish Vet. J. 1971. - V. 25. - N 12. - P. 258-260.

71 Whitehead J. Observations on the repeated treatment for fasciolosis of stock on a farm in South-West England / J. Whitehead // Veterinary Record. 1976. - v. 98.-№ l.-P. 5-9.

72 Вишняускас А.Ю. Химиопрофилактика фасциолеза овец / А.Ю. Вишыяускас, E.H. Василевич // Ветеринария. — 1983. — № 2. С. 46.

73 Ниссенбаум И.А. Восстановительные процессы в печени больных фас-циолезом овец после лечения ацемидофеном / И.А. Ниссенба^ // Пробл. вет. иммунол.-М.: Агропромиздат, 1985. С. 180-183.

74 Нурхаметов Х.Г. Компенсаторно-восстановительные процессы в организме овец при фасциолезе после дегельминтизации,и стимуляции: дисс. . доктора вет. наук / Х.Г. Нурхаметов. Уфа, 1989. - 476 с.

75 Вишняускас А.Ю. Разработка новых схем-применения ацемидофена для:Iпрофилактики остропротекающего фасциолеза / А. Ю. Вишняускас, К.Ю. Бараускас, A.A. Вишняускас // Бюлл. Всесоюз. ин-та гельминтол. — 1988.-Вып. 51.-С. 28-31.

76 Эффективность ацетвикола для профилактических дегельминтизаций и лечения овец при фасциолезе / А.Ю. Вишняускас и др. // Бюлл. Всесоюз. ин-та гельминтол. 1986.- Вып. 42. - С. 34-381.

77 Kuttler K.L. Comparative therapeutic efficacy of carbon tetrachloride, hexa-chloraethane and MB 3625 in Fasciola hepatica infections of sheep / K.L. Kuttier, N.J. Mattews, D.W. Marble // Amer. J. Vet. Res. 1963. V. 24. - P. 5258.

78 Исмаилов К. Экспериментальные исследования по патогенетической терапии фасциолеза: автореф. дисс. . канд. вет. наук / К. Исмаилов. М., 1973.-40 с.

79 Чернуха В .К. Фасциолез крупного рогатого; скота и его профилактика в условиях промышленных комплексов / В.К. Чернуха, В .П. Ревуцкий // Сборник науч. трудов. Харьков: ХСХИ, 1984. - С. 37-43 .

80 Москалев В.Г. Опыт лечения фасциолеза крупного рогатого скота / В .Г. Москалев, М.Ш. Акбаев // Сборник науч. трудов. — Ленинград, 1989. -С. 103-107.

81 Davis M. Chemotherapy of fascioliasis II. 4-cyano-2iodo-6-nitrophenol (Ni-troxynil) and related compounds / M. Davis, J. Rosenbaum, D.E. Wrigh // J. Sei. Ed. Agric. 1969. -V. 20. -N 12. -P. 748-754.

82 Reuss J. Untersuchungen über die Anvendurg des infizierbaren Preparates «Dovenix» zur Behandlung der Rider fasciolose / J. Reuss // Tierärztliche Um-chau. 1971.-Bd. 26.-H. 9. - S. 442-450.

83 Бакина Е.Б., Белозеров С.Н. Эффективность роленола, дисмиосикса при гельминтозах сельскохозяйственных животных / Е.Б. Бакина, С.Н. Белозеров // Информационный листок. — Киров, 1999. — № 53. — 3 с.

84 Jones W.H. Fascioliasis and oxyclozanide / W.H. Jones I Net. Rec. 1966. -V.79.-№ 23. -P. 716-717.

85 Effectivitad de das dosis de oxyclosanide en bovines adultos infestados menta per fasciola hepatica / Y.Y. Mosa et al. // Rev. salud. Anim. 1981. - V. 3. -N2.-P. 75-83.

86 Рудайтис A.A. Сравнительная оценка новых антгельминтиков при экспериментальном фасциолезе крупного рогатого скота: автореф. дисс. . канд. вет. наук / A.A. Рудайтис. М., 1983. - 25 с.

87 Guilhon J. Activite du 3,5-diiodo-3-chloro-4-(p-chlorophenoxy)-salicylanilide surles forms immature des Fasciola hepatica / J. Guilhon, G. Jolive, R.L. Caillier // Bull. Acad. Vet. 1970. - V. 43. - P. 419-426.

88 Хитенкова Л.П. Эффективность дисалана и дифенида при фасциолезе овец / Л.П. Хитенкова, В.Б. Писков, В.Ш. Полуэктов // Ветеринария. -1976,-№2.-С. 60-61.

89 Пушкарев A.C. Дисалар антипаразитарный препарат широкого спектра действия / A.C. Пушкарев // Экологическая паразитол. — Иваново, 1998.-С. 32.

90 Хромов К.А. Фасциолез и стронгилятозы желудочно-кишечного тракта крупного рогатого скота в условиях Центральной зоны России и поиск средств борьбы с ними: дисс. . канд. вет. наук / К.А. Хромов. -М., 2005. 163 с.

91 Van-Canteren H. Toxicological properties of closantel / H. Van-Canteren, J. Vanderberghe / /Drug, and chemical toxicology. 1985. - V. 8. - P. 101-123.

92 Ятусевич А.И. Сравнительная эффективность антгельмин гиков при фасциолезе крупного рогатого скота / А.И. Ятусевич // Тез; докл. науч. конф. «Меры профилактики и борьбы с трематодозами человека и животных». — Сумы, 1991.-С. 136-137.

93 Зубков B.C. Эффективность аверзантеля и аверсекта плюс при фасциолезе крупного рогатого скота / B.C. Зубков // Труды региональной научно-практической конференции «Аграрная наука состояние и проблемы». — Ижевск: Из-во ИжГСХА, 2002. - С. 204-205.

94 Theodoride V.J. Efficacy of albendasole against Fasciola hepatica in cattle / V.J. Theodorides, J.F. Freeman // Vet. Ree. 1980. - V. 106. - NT. - P; 97.

95 Малкандуева Л.И.Эколого-биологическая оценка фасциологенных очагов в пограничных биогеоценозах и усовершенствование методов наступательной профилактики инвазии: автореф. дисс. . канд. вет. наук / Л.И. Малкандуева. Махачкала, 2004. - 22 с.

96 Абрамов В.Е. Эффективность клозальбена при паразитарных болезнях овец и крупного рогатого скота / В.Е. Абрамов, И.А. Архипов, Н.И. Ко-шеваров // Ветеринария. — 1999. № 8. — С. 33-36.

97 Липницкий С.С. Восстановительная терапия крупного рогатого скота при фасциолезе в ассоциации со стронгилятозами / С.С. Липницкий // Межведомственный сборник. Минск, 1991. - Вып. 29. - С. 95-99.

Код для цитирования: Скопировать