IX Международная студенческая научная конференция Студенческий научный форум - 2017

Введение. Антагонизм и синергизм - это неразрывно связанные стороны взаимоотношений между живыми организмами. Эубиоз, то есть равновесие между организмом человека и его нормальной микрофлорой, также как и баланс между микробными популяциями, возможны лишь при наличии равновесия между положительными и отрицательными взаимными влияниями. Поэтому вполне закономерно, что в настоящее время возникновение и развитие эндогенных инфекционных заболеваний, в частности, внебольничных пневмоний, принято рассматривать именно с позиций нарушения баланса между макроорганизмом и микрофлорой [1]. Снижение лимитирующего влияния иммунной системы приводит к активизации и размножению условно патогенной аутофлоры. При этом виды, способные к более активному размножению и колонизации, в конечном счете, становятся причиной развития инфекционного процесса. Нечто подобное происходит и при экзогенном инфицировании нестерильных локусов организма человека, когда возбудитель должен преодолеть конкурентное влияние аутофлоры. Здесь, наряду с другими факторами врожденной и приобретенной вирулентности, важную роль должна играть антагонистическая активность бактерий, то есть их способность блокировать либо замедлять размножение иных видов [2, 5]. Механизмы проявления антагонистической активности могут быть весьма разнообразны: конкуренция за трофические субстраты и/или сайты адгезии, высокая активность ферментов, изменение окислительно-восстановительного потенциала и уровня рН среды, выделение антибиотикоподобных метаболитов и т.д. Результатом межмикробных взаимодействий является формирование доминирующего вида или ассоциации.

В настоящее время антагонистическая активность рассматривается как один из дополнительных факторов вирулентности и персистенции условно патогенных микроорганизмов.

Цель работы – оценка антагонистической активности бактериальных культур, выделенных из нижних дыхательных путей у пациентов, находящихся в отделении реанимации с диагнозом «Пневмония».

Материалы и методы. Изучены 54 микробные культуры, выделенные из мокроты пациентов, находившихся в отделении реанимации и интенсивной терапии многопрофильного стационара с диагнозом «Пневмония». Среди них: 14 культур Pseudomonasaeruginosa, 13 - Klebsiellapneumoniae, 9 - Escherichiacoli, 7 - Acinetobacterbaumanii, а также 11 культур Staphylococcusaureus. Все они были выделены в диагностически значимых концентрациях из проб мокроты, прошедших бракераж по внешнему виду и результатам бактериоскопии.

Для изучения антагонистической активности применяли классический метод отсроченного антагонизма, а также тест ингибирования биолюминесценции [3, 4]. В первом случае оценивали способность культур угнетать рост тест-штаммов: Ps.aеruginosa, E.coli M-17, E.coli O-127, S.aureus и Cand.albicans. Во втором случае использовали микробиологический индикатор токсичности (МИТ), разработанный в ИЭГМ УрО РАН под руководством профессора Р.А.Пшеничнова. Принцип действия МИТ состоит в оценке изменения биолюминесценции генноинженерного штамма E. сolilum+ C-50 под воздействием изучаемых культур и их кратных разведений с помощью люминометра «Биотокс-10».

Биометрическую обработку данных проводили с использованием компьютерных программ «Microsoft Excel» и «Биостат».

Результаты. Данные, полученные при использовании всех методологических подходов, свидетельствовали о наличии достаточно выраженных антагонистических свойств у микрофлоры, выделенной из нижних дыхательных путей у больных внутрибольничной пневмонией. Так, тест подавления биолюминесценции показал, что все 54 изученные культуры обладали антагонистической активностью в отношении штамма E.colilum+ C-50 (см.табл.1). Различия между ними сводились лишь к степени подавления активности тест-штамма, а также к срокам проявления и стабильности антагонистических свойств.

Таблица 1. Показатели угнетения биолюминесценции исследуемыми культурами, % (М±m).

время измерения	30´	60´	90´	120´
Ps.aeruginosa	86,86 ± 2,73	86,03 ± 2,71	83,59 ± 3,50	86,20 ± 3,10
A. baumanii	87,43 ± 5,10	86,59 ± 5,31	82,20 ± 8,10	82,16 ± 6,74
K. pneumoniaе	70,48 ± 7,73	78,39 ± 7,06	82,71 ± 7,36	86,25 ± 4,51
E. coli	58,80 ± 4,89	60,07 ± 8,43	69,36 ± 4,25	80,61 ± 2,86
S. aureus	10,34 ± 5,33	-0,32 ± 6,72	-17,58 ± 14,14	-25,08 ± 20,53

Наиболее выраженное угнетение тест-штамма вызывали культуры Ps.aeruginosa, чье действие было стабильно высоким (показатели, замеряемые в течение 2-х часов, были практически равны). Подобным эффектом характеризовались и культуры A. baumanii.

Средние показатели культур ацинетобактеров не давали статистически значимых различий с аналогичными значениями синегнойной палочки. Примечательно, что хотя Ps.aeruginosa является общеизвестным антагонистом, культуры ацинетобактеров практически не уступали псевдомонадам по показателям антагонистической активности. Активность культур псевдомонад и ацинетобактеров, разведенных в 2 раза (в таблице не показано), снижалась лишь на 10-15%.

Первоначальные показатели энтеробактерий (клебсиелл и эшерихий) оказались достоверно ниже, чем у псевдомонад и ацинетобактеров (табл.1), однако ко 2-му часу наблюдения они достигли уровня 80% и более, что позволяет предположить наличие тонких, специфичных для родственных бактерий механизмов подавления метаболизма тест-штамма. При разведении культур их активность снижалась на 20-30% (у эшерихий - до 40%), что можно трактовать, как свидетельство низкой антагонистической активности.

Культуры стафилококка характеризовались самыми низкими показателями антагонистической активности. Кроме того, в последних измерениях отмечался противоположный эффект - усиление биолюминесценции. Этот эффект связывают, прежде всего, с действием компонентов питательной среды, которые проявляют свой стимулирующий эффект при отсутствии антагонистической активности микробов.

Показатели отсроченного антагонизма свидетельствовали о более низкой чувствительности этого метода (табл.2). Только показатели псевдомонад соотносились с описанными выше; у других культур отмечали сужение спектра активности и низкие цифровые показатели.

Таблица 2. Показатели угнетения тест-штаммов исследуемыми культурами, мм (М±m).

	Ps.aеruginosa	E.coli M-17	E.coli O-127	S.aureus	Cand.albicans
Ps.aeruginosa	3,36 ± 1,39	23,50 ± 1,35	24,29 ± 0,71	22,07 ± 1,56	24,14 ± 0,86
A. baumanii	0,00 ± 0,00	2,43 ± 1,74	3,29 ± 2,25	0,71 ± 0,71	0,71 ± 0,71
K.pneumoniae	0,46 ± 0,46	13,38 ± 2,83	7,69 ± 1,27	3,54 ± 0,93	1,92 ± 1,17
E. coli	0,00 ± 0,00	5,11 ± 3,38	6,00 ± 1,11	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00
S. aureus	0,00 ± 0,00	5,64 ± 1,41	4,00 ± 0,86	2,55 ± 0,77	0,55 ± 0,55

Полученные результаты вполне соотносятся с полученными ранее данными об антагонистической активности возбудителей внебольничных пневмоний и подтверждают тезис о значимости данного признака при развитии инфекционного процесса в легких [2].

Выводы.

1. Диагностически значимая микрофлора, выделенная из нижних дыхательных путей больных пневмониями, обладает достаточно выраженной антагонистической активностью.

2. Наиболее чувствительным и информативным способом выявления антагонизма является тест угнетения биолюминесценции.

3. Неоднородность культур по выраженности антагонизма и срокам его проявления указывают на множественность механизмов реализации этого признака.

4. Дальнейшее изучение антагонистических свойств условно патогенной микрофлоры позволит глубже оценить роль этого фактора в возникновении и развитии инфекционных процессов, вызванных данными микроорганизмами.

Литература.

1. Бухарин О.В., Лобакова Е.С., Перунова Н.Б., Усвяцов В.Я., Черкасов С.В. Симбиоз и его роль в инфекции // Екатеринбург, УрО РАН. 2011.- 302 с.

2. Катрецкая Г.Г., Маслов Ю.Н., Несчисляев В.А., Черешнев В.А. Антагонистические и адгезивные свойства условно патогенной микрофлоры, выделенной из нижних дыхательных путей при внебольничных пневмониях // Вестник уральской медицинской академической науки. №1 (38). 2012. С.79-81.

3. МУК 4.2.2602-10. 4.2. Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Система предрегистрационного доклинического изучения безопасности препаратов. Отбор, проверка и хранение производственных штаммов, используемых при производстве пробиотиков. Методические указания. - М., 2010.

4. Патент 2187801 Россия А 61 К 35/74, G 01 N 33/15. Способ определения антагонистической активности пробиотиков. В.А. Несчисляев, Р.А. Пшеничнов, Е.Г. Арчакова, Л.П. Чистохина, И.В. Фадеева. 2002.

5. Хуснутдинова Л.М. Модификация биологических свойств бактерий в условиях ассоциации индигенной и патогенной микрофлоры // Вестник ОГУ, 2006. – № 12. – С.11-15.

Код для цитирования: Скопировать