VII Международная студенческая научная конференция Студенческий научный форум - 2015

В гуманитарной медицине, и в ветеринарной хирургии последние годы определенное внимание исследователей уделяется состоянию системы гемостаза, как основной части воспалительного процесса, который в свою очередь является неотъемлемой частью раневого процесса[1, 3, 4, 5, 7].Значение системы гемостаза в биологии раневого процесса очень велико, так в начале первой фазы раневого процесса преобладают процессы тромбообразования, а далее происходит очищение раны от девитализированных тканей, микротромбов и восстановление микроциркуляторного русла в повреждённых тканях [1, 3].Следовательно, данные трансформации, связанные с коагуляцией и фибринолизом, происходящие в крови животных с гнойными ранами, необходимо учитывать при постановке диагноза, прогнозе на дальнейшее течение, а также при использовании различных схем лечения вышеуказанной патологии[3, 5, 7].

Материалы и методы исследования. Лабораторные исследования выполнялась на базе НПЛ межкафедрального центра факультета ветеринарной медицины ФГБОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия имени П.А. Столыпина». Экспериментальная часть выполнялась в СПСК «Дружба» Чердаклинского района Ульяновской области. У бычков чёрно пёстрой породы крупного рогатого скота в возрасте 12 месяцев, массой тела 200-220 кг под местным обезболиванием моделировали в области бедра с латеральной стороны гнойные раны в соответствии с руководством [6]. Лечебные процедуры начинали через сутки после инфицирования. У животных производили хирургическую ревизию, механическую очистку краёв раны. Затем смазывали раневую поверхность соответствующей эксперименту мазью: в опытной группе - Гипофаевип, в контрольной - Левомиколь. Гемостазиологические показатели крови определяли в соответствии с методическими указаниями[2].

Результаты исследований.

Количество фибриногена через час после нанесения ран уменьшилось из-за оперативного вмешательства при моделировании гнойной кожно-мышечной раны на 32% в опытной и на 15,5% в контрольной группе по сравнению с фоновыми показателями. На первые сутки лечения уровень фибриногена увеличился на 72,6% и 86,2% в каждой соответственной группе. На третий день лечения в обеих группах наблюдался максимальный подъём уровня фибриногена в опытной группе на 96,3% и в контрольной на 86,2%. Далее количество фибриногена в опытной группе более быстрыми темпами снижалось и на 12-е сутки лечения было ниже относительно фона на 11,8%, в контрольной же группе эти показатели были выше, а на 12-е сутки были ниже фона на 8,6%. На момент заполнения раневого дефекта полноценной мелкозернистой грануляционной тканью показатели фибриногена в плазме крови телят с гнойными ранами были ниже фоновых на 21,1% в опытной и на 15% в контрольной группе соответственно. Повышенный уровень фибриногена в контрольной группе свидетельствовало о вторичном инфицировании раны. Активированное частично/парциально тромбопластиновое время (АЧТВ) в плазме крови у исследуемых животных до нанесения ран было в пределах нормы и в среднем составило 54,37 с. С шестых по 15-е сутки наблюдалось уменьшение уровня АЧТВ в опытной группе с 10,3% до 45,7% ниже фоновых показателей. В контрольной же группе с третьих по 23-и сутки лечения и на момент полного заживления дефекта уровень АЧТВ был ниже фоновых показателей, что коррелировало с повышенным содержанием фибриногена и свидетельствовало о негативном течении раневого процесса. Тромбиновое время в среднем по группам составило 11,31 с., что было в пределах физиологической нормы. Далее  в процессе всего лечения уровень тромбинового времени был выше фоновых показателей, но в контрольной группе эти значения были выше. Протромбиновое временя в среднем составило 45,8 с. С первых по третьи сутки лечения в контрольной группе наблюдалось значительное удлинение протромбинового времени. С шестых до 15-х суток протромбиновое время было выше фоновых показателей в среднем на 41,2%. На 19-й день лечения протромбиновое время было ниже фонового на 8,5%. В опытной группе с первых по девятые сутки наблюдалось плавное удлинение протромбинового времени. На девятые сутки отмечен максимальный подъём протромбинового времени на 46% по сравнению с фоном, далее показатели снижались, так с 19-х по 23-е сутки значение ПВ было ниже фона с 7,9% до 10,7% соответственно дням. На момент полного заживления дефект уровень протромбинового времени был выше фоновых значений  в обеих группах на 25,4% и 21,7% в опытной и контрольной соответственно. В фоновых показаниях исследований значений фибринолиза, мы не выявили особых различий, и они составили 1,13-1,37%. Активизация фибринолитической активности началась, через час после нанесения ран эти показатели были схожими и не имели достоверной разницы: в опытной группе они составили 2,98% и контрольной - 2,82%. Однако в разгар начавшихся воспалительных процессов в ране с третьих по девятые сутки лечения, мы наблюдали следующие изменения. В опытной группе фибринолитическая активность с шестых по 23-е сутки лечения плавно восстанавливалась с фоновыми значениями, её значения составляли от 11,34% до 3,43% соответственно дням, к концу лечения уровень фибринолиза незначительно превышал физиологическую норму (2,31%). В контрольной же группе на шестые и девятые сутки фибринолитическая активность была выше, чем в опытной, её значения составили 18,77% и 17,25% соответственно дням. С 12-го дня предпринятого лечения в этой группе отмечалось снижение уровня фибринолиза. На момент выздоровления Фибринолитическая активность была выше по сравнению с опытной группой животных и с фоновыми показателями, что составляло 4,01% (при норме 1,9-2,2%). При исследовании этанолового скрининг-теста в фоновых показателях все животные реагировали отрицательно. На третьи сутки лечения в опытной и контрольной группах 60% (три из пяти) животных реагировали положительно, а на шестые в 100% случаев. Начиная с 9-х суток в опытной группе образование продуктов деградации фибрина (ПДФ) уменьшается до 60% (три из пяти), а  в  контрольной до 80% (четыре из пяти животных). На 12-е сутки положительно реагирующих животных на этаноловый тест в опытной группе осталось 20% (один из пяти животных), в контрольной 60% (три из пяти). На 15-е сутки в обеих группах 20% животных реагировали положительно. На 23 сутки в опытной группе все животные реагировали отрицательно, а в контрольной - 20% (один из пяти) положительных животных.

Заключение. Анализ проведённых исследований плазмы крови у телят,  с экспериментально воспроизведёнными гнойными кожно-мышечными ранами показал, что в опытной группе, где применяли лечение гидрофильной мазью Гипофаевип, гемостазиологические показатели восстанавливались с фоновыми значениями в более короткие сроки, по сравнению с контрольной.

Список использованной литературы

1.         Гимранов, В.В. Классификация болезней в области пальцев у крупного рогатого скота / В.В. Гимранов, С.В. Тимофеев // Ветеринария. - 2006. - №2. - С. 48-49

2.         Ермолаев, В.А. Методы исследования системы гемостаза в ветеринарии/ В.А Ермолаев, Б.С.Семёнов, С.И. Лютинский // метод. рекомендации. - Ульяновск: УГСХА, 1998.  - 73 с.

3.         Никулина, Е.Н. Динамика изменения гемостазиологических показателей при лечении гнойных ран у телят / Е.Н. Никулина, В.А. Ермолаев, П.М. Ляшенко // Известия Оренбургского государственного аграр­ного университета. - 2012. - Том 4, № 36-1. - С. 78-79.

4.         Организационно-технологические основы ветеринарного об­служивания крупного рогатого скота при хирургических болезнях на молочных комплексах / Э.И. Веремей, В.М. Руколь, А.А. Стекольников, Б.С. Семенов // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2013. - № 3. - С. 27-29.

5.         Состояние системы гемостаза, распространённость, этиология и некоторые иммуно-биохимические показатели крови у коров симментальской породы с болезнями копытец / Е.М. Марьин, В.А. Ермолаев, П.М. Ляшенко, А.В. Сапожников, О.Н. Марьина // Научный вестник Технологического института - филиала ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина». - 2013. - № - 12. - С. 269-273.

6.         Шалимов С.А. Руководство по экспериментальной хирургии/ С.А. Шалимов, А.П. Радзиховский Л.В. Кейсевич// М.: Медицина, 1989. - 272  с.

7.         Шаталин А.Ю. Диссеменированное внутрисосудистое свёртывание крови у крупного рогатого скота с диагнозом гнойно-некротическая язва мякиша копытец / А.Ю. Шаталин, А.В. Пензяков, П.М. Ляшенко //Успехи современного естествознания. - 2014. - № 8. - С. 76-77.