VII Международная студенческая научная конференция Студенческий научный форум - 2015

Материалы и методы

В качестве объектов исследования использовались молоко и молочные продукты: кефир, творог, кисломолочные продукты, обогащенные бифидобактериями, кисломолочные продукты, мороженое, сыр, масло сливочное.

Для исследования этих продуктов использовались питательные среды: Кесслера, Эндо, а так же голодный агар.

Методы для исследования используются на основании документа Стандартизации молочной продукции по документу: Приложение 4 к Федеральному закону «Технический регламент на молоко и молочную продукцию».

Методы выявления и определения количества бактерий группы кишечных палочек (колиформные бактерий) (ГОСТ Р 50474-93)

Настоящий стандарт распространяется на пищевые продукты, и устанавливают метод выявления в определенной навеске пищевого продукта колиформных бактерий и три метода определения их количества: метод наиболее вероятного числа (НВЧ), методы посева в/на агаризованные селективно-диагностические среды.

Метод определения НВЧ колиформных бактерии предназначен для пищевых продуктов, содержание в 1 г. твердого продукта менее 15 клеток колиформные бактерий.

Метод определения количества колиформных бактерий посевом в агаризованные селективно-диагностические среды предназначен для пищевых продуктов, содержащиеся в 1 г. твердого продукта более 150 или в 1 мл жидкого продукта более 15 колониеобразующих единиц (КОЕ) колиформных бактерий.

Метод определения количества колиформных бактерий посевом на агаризованные селективно-диагностические среды предназначен для пищевых продуктов, содержащиеся в 1 г. твердого продукта более 1500 или в 1 мл жидкого продукта более 150 колониеобразующих единиц (КОЕ) колиформных бактерий.

1. Сущность метода

Методы выявления и определения наиболее вероятного числа колиформных бактерий основаны на высеве определенного количества продукта и (или) разведение навески продукта в жидкую селективную среду с лактазой, инкубировании посевов, учете положительных пробирок. Пересев, при необходимости, культуральной жидкости на поверхность агаризованной селективно-диагностической среды для подтверждения по биохимическим и культуральным признакам роста принадлежности выделения колоний к колиформным бактериям.

Методы определения количества колиформных бактерий посевом в/на агаризованные селективно-диагностические среды основаны на высеве определенного количества продукта или его разведений в/на агаризованную селективно-диагностическую среду с лактозой, инкубировании посевов, подсчете типичных колоний, подтверждение, при необходимости, по биохимическим признакам принадлежности выделение колоний к колиформных бактерий.

2. Отбор проб и подготовка проб – по ГОСТу 26668, ГОСТу 26669.

3. Аппаратура, материалы, реактивы и питательные среды

Для проведения испытания применяют аппаратуру, материалы и реактивы по ГОСТу 10444.1.

Для проведения испытания применяют среды: Кесслера, Эндо.

4. Приготовление растворов

Растворы и реактивы для окраски по Граму готовят по ГОСТу 10444.1

4.1.Приготовление питательных сред

Среда Кесслера:

10 г. пептона

2,5 г. лактозы

5 г. сухой говяжей желчи или 50 млнатуральной желчи

2 млр-ра генцианвиолета или кристалиталическая фиолетовая, добавляют к 1000 млдистиллированной воды (в случае использования натуральной желчи к 950 мл дистиллированной воды).

Тщательно перемешивают, нагревают на слабом огне до кипения, кипятят 1-2 мин, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, охлаждают до 45-55 ^оС, устанавливают рН таким образом, чтобы после стерилизации он составлял при 25 ^оС (рН 7,3±0,2). Среду разливают по 10 млв пробирки с поплавками или в колбы по 100 мли стерилизуют 20 минут при температуре (115±1)^о С.

Среда Эндо выпускается Дагестанским НПО «Питательные среды» и готовится по прописи указанной на этикетке.

5. Проведение испытаний

5.1.Посевы для определения количества колиформных бактерий

5.1.1.Навески продукта готовят:исходное и ряд десятикратных разведений по ГОСТу 26669 так, чтобы можно было определить в 1 г. продукта предполагаемое количество колиформных бактерий или их количество, указанное в нормативно-технической документации на конкретный продукт.

5.1.2.При определении количества колиформных бактерий посевом на агаризованные селективно-диагностические среды по 0,1 или 0,2 мл навески продукта или его разведения наносят на поверхность среды Эндо, разлитых в две параллельные чашки Петри. Подготовку чашек Петри со средой к посеву и посев проводят по ГОСТ 26670.

При применении метода мембранных фильтров по ГОСТ 26670 фильтры переносят на поверхность агаризованной селективно-диагностической среды, избегая образования пузырьков воздуха между средой и фильтром. Поверхность фильтра с осевшими на ней бактериями должна быть обращена вверх.

При определении количество колиформных бактерий посевом в агаризованные селективно-диагностические среды по 1 млнавески продукта или его разведения вносят в две параллельные чашки Петри. Посевы заливают по ГОСТ 26670 на поверхности Эндо.

5.1.3. При определенном количестве колиформных бактерий по методу НВЧ высевают 3 последовательности навески продукта и/или его разведения, отличающихся по количеству продукта в них в 10 раз.

Каждую навеску продукта и/или его разведений в трехкратной повторности высевают в пробирки со средой Кесслера.Соотношение между количеством высеваемого продукта или его разведения и питательной средой 1:9; а для сред двойной концентрации 1:1.

5.2. Посев для проведения колифомфных бактерий в определенной навеске продукта.

При выявлении колиморфных бактерий в определенной навеске продукта или его эквивалентном разведении эту навеску или разведение вносят в одну из питательных сред (среда Кесслера).

Соотношение между количеством высеваемого продукта или его разведением и питательной средой 1:9; а для сред двойной концентрации 1:1.

5.3.При испытании высококислотных продуктов для предотвращения резкого снижения рН (на 0,5 и более) питательных сред при внесении в них продукта или его разведений pH питательных сред доводят допустимых значений с помощью стерильного раствора гидроокиси натрия, приготовления по ГОСТ 10444. 1, или при приготовлении питательных сред pH устанавливается выше заданного с учетом его последнего снижения при внесении продукта. рН устанавливается опытным путем.

5.4.Посевы на агаризованных и жидких средах инкубируют при температуре (36±1) ^оС в течение 24-48 часов. Чашки Петри с посевами инкубируют дном вверх.

Начинают просматривать посевы через (24±3) часа, окончательный учет проводят через (48±3) часов.

Положительными считают посевы в жидкие среды, в которых имеет место интенсивный рост микроорганизмов, проявляющие помутнение среды, образование газа, подкисление среды (т.е. изменением цвета среды).

5.5.При необходимости, для подтверждения принадлежности микроорганизмов, выросших на жидких средах, к колиформным бактериям делают пересевы по ГОСТ 26670 на поверхность агаризованной селективно-диагностических сред, Эндо. Посевы инкубируют при температуре (36±1) ^оС в течение (24±3) часа.

5.6.Посевы на агаризованные среды (среда Эндо) после инкубирования просматривают и отмечают рост характерных колоний. На среде Эндо колиформные бактерии образуют колонии бледно-розового или красного цвета, часто с металлическим блеском.

5.7.При необходимости подтверждения принадлежности выросших микроорганизмов к колиформным бактериям из чашек Петри с посевами на Эндо отбирают не менее чем по 5 колониям.

Из каждой отобранной колонии приготавливают мазки и окрашивают по Граму (по ГОСТ 10444.3)

Колиформные бактерии являются Грам отрицательные палочки.

6. Обработка результатов

6.1. Результаты оцениваются по каждой пробе отдельно.

6.2. К колиформным бактериям относят аэробные и факультативно-анаэробные не образующие спор Грам отрицательные палочки, сбраживают лактозу с образованием кислоты и газа.

6.3. При определении НВЧ или при выявлении колиформных бактерий в определенной навеске продукта посевы в жидкие среды считают положительным, если при последующем пересеве и подтверждений характерных колоний хотя бы в одной будут обнаружены колиформные бактерии.

НВЧ колиформных бактерии 1 г.продукта определяют по количеству положительных пробирок по ГОСТ 26670.

6.4. Если при подтверждении характерных колоний в 80 % случаев, т.е. не менее чем в 4 из 5 колоний, подтвержден рост колиформных бактерии, то считают, что все характерные колонии выросшие на чашке принадлежат к колиформным бактериям.

В остальных случаях количество колиформных бактерии определяют исходя из процентного отношения подтвержденных колоний к общему числу характерных колоний, взятых на подтверждение.

Пересчет количества колиформных бактерии определяют посев в агаризованные среды, на 1 г. продукта проводят по ГОСТ 26670.

Пересчет количества колиформных бактерии определяют посев на агаризованные среды, на 1 г. продукта проводят по ГОСТ 26670.

6.5. Результаты определенного количества колиформных бактерии и выявления их в определенной навеске продукт записывается по ГОСТ 26670.

Методы определения количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов (ГОСТ 10444.15-94)

1. Область применения

Настоящий стандарт распространяется на пищевые продукты и устанавливает методы определения количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов (бактерий, дрожжей и плесневых грибов) и метод посева в агаризованные питательные среды наиболее вероятного числа (НВЧ).

Метод определения количества мезофильных анаэробных факультативно-анаэробных микроорганизмов предназначен для пищевых продуктов, содержится в 1 г. твердого продукта менее 150 или 1 мл жидкого продукта более 15 колониеобразующих единиц (КОЕ) мезофильных аэробных факультативно-анаэробных микроорганизмов.

Метод определения наиболее вероятного числа мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов предназначен для пищевых продуктов, содержание в 1 г. твердого продукта менее 15 КОЕ мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов.

2. Сущность методов

Метод определения количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов посевом в агаризованные питательные среды основан на высеве продукта или разведения навески продукта в питательную среду, инкубировании посевов, подсчете всех выросших видимых колоний.

Метод определения НВЧ мезофильных аэробных и факультативно-аэробных микроорганизмов основан на высеве продукта и/или разведений навески продукта в жидкую питательную среду, инкубировании посевов, учете видимых признаков роста микроорганизмов, пересеве при необходимости, культуральной жидкости на агаризованные питательные среды для подтверждения роста микроорганизмов.

3. Проведение испытания

Отбор и подготовка проб для проведения анализа по ГОСТ 26668, ГОСТ 26669.

3.1.Из навески продукта готовят исходное и ряд десятикратных разведений по ГОСТ 26669, так чтобы можно было определить в продукте предполагаемое количество мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов или указанное в нормативно-технической документации на конкретный продукт.

3.2.При определенном количестве мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов посевом в агаризованные питательные среды из продукта и/или из каждого соответствующего разведения по 1 млвысевают в две параллельные чашки Петри. Посевы заливают по ГОСТ 26670 одной из агаризованных сред. Если ожидают ползучий рост микроорганизмов из родов Bacillus или Proteus, посевы заливают по ГОСТ 26670 вторым слоем питательной среды или голодного агара (приблизительно 4 мл).

3.3.При определении количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов по методу НВЧ высевают три последовательные навески продукта и/или его разведения, отличающиеся по количеству высеваемого продукта в 10 раз.

Каждую навеску продукта и/или его разведения, в трехкратной повторности высевают пробирки с одной из жидких питательных сред. Соотношение между количеством высеваемого продукта и его разведением и количеством питательной среды от 1:5 до 1:7.

3.4.Посевы инкубируют при температуре 30 ⁰С в течение 72 часов в аэробных условиях.

3.5.После инкубирования посевов подсчитывают количество колоний, выросших на чашках Петри. Для подсчета отбирают чашки Петри, на которых выросло от 15-300 колоний.

На жидких питательных средах отмечают наличие или отсутствие видимых признаков роста (газообразования, появление мути, осадок).

Если рост микроорганизмов в жидких питательных средах выражается недостаточно четко, то проводят микрокопирование посевов, методом раздавленной капли или висячей капли с одновременным подтверждением возможности роста микроорганизмов путем пересева культуральной жидкости по ГОСТ 26670 внутрь или на дому из агаризованных сред.

При необходимости, из колоний готовят мазки, окрашивают по Грамму (по ГОСТ 10444.3) и микроскопируют определения наличия каталазы (по ГОСТ 10444.3).

4.Обработка результатов

4.1.Результаты оцениваются по каждой пробе отдельно.

4.2.Результат подсчета количества колоний по 3.5 пересчитывают на 1 г. (мл) продукта по ГОСТ 26670.

4.3.НВЧ мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов определение по количеству положительных пробирок по ГОСТ 26670.

4.4.Результаты определения количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов записывают по ГОСТ 26670.

Метод выявления бактерий Salmonella ( ГОСТ Р 50480-93)

Метод выявления бактерий p. Salmonella основан на высеве определенного количества продукта в жидкую неселективную среду, инкубировании посевов, последующем выявлении в этих посевах бактерий, способные развиваться в жидких селективных средах, имеющие типичные колонии на агаризованных дифференциально-диагностических средах, образующих типичные колонии на агаризованных дифференциально-диагностических средах, имеющие типичные для бактерии p. Salmonella биохимические и серологические характеристики.

Метод выявления и определения бактерии Listeriamonocytogenes (ГОСТ Р 51921-2002)

Метод основан на высеве определенного количества пищевого продукта в жидкую селективную питательную среду (с предварительным обогащением), последнее при пересеве на агаризованные селективно-диагностические среды и культивирование посевов при оптимальных условиях. Принадлежность выявленных колоний к Listeriamonocytogenes определяют по биологическим и биохимическим свойствам.

ГОСТ 9225-84. Молоко и молочные продукты. Методы микробиологического анализа.

ГОСТ 13928-84. Молоко и сливки заготовляемые. Правила приемки, методы отбора проб и подготовка их к анализу.

Метод определения Staphylococcusaureus(ГОСТ 30347-97)

Настоящий стандарт распространяется на молоко и молочные продукты, закваски, Бактериальные концентраты и препараты и устанавливает два метода определения Staphylococcusaureusв определенном объеме или навеске продукта - определение количества с предварительным обогащением; определение количества без предварительного обогащения.

Метод определения Staphylococcusaureusс предварительным обогащением основан на высеве положительных пробирок, пересеве на плотные селективные среды с последующим подтверждением принадлежности выросших колоний к Staphylococcusaureus.

Метод определения количества Staphylococcusaureusбез предварительного обогащения посевом на агаризованные селективные среды основан на высеве продукта или разведении его на поверхности плотной среды, инкубировании, подсчете типичных колоний Staphylococcusaureusпо плазмокоагулирующей способности.

Метод определения дрожжей и плесневых грибов (ГОСТ 10444.12-88)

Настоящий стандарт распространяется на пищевые продукты и устанавливает метод определения в них дрожжей и плесневых грибов.

Метод основан на высеве продукта и (или) их разведений в питательные среды, определении принад­лежности выделенных микроорганизмов к плесневым грибам и дрожжам по характерному росту на питательных средах и по морфологии клеток.

Метод предназначен для:

• установления соответствия микробиологических показателей качества пищевого продукта требованиям нормативно-технической документации;

• установления промышленной стерильности консервов;

• выяснения причин возникновения дефектов продуктов.

Результаты исследования

В результате исследований было проверено 508 образцов.

Таблица № 1

Образцы молочной продукции, принятые для санитарно-микробиологического исследования в «Центре Приморский» в 2013 году

Название продуктов (образцов)	Количество принятых образцов	%
Молоко сырое	6	1,2
Молоко питьевое	24	4,7
Молоко сухое	4	0,8
Кисломолочные продукты	81	15,9
Кисломолочные продукты, обогащенные бифидобактериями (Бифидумбактерин)	252	49,6
Сметана	18	3,5
Сыр	10	2,0
Творог	23	4,6
Масло сливочное	9	1,7
Сырки творожные и десерты сливочные	17	3,5
Мороженое	64	12,6
Всего принято: 508

Исходя из данных в таблице 1, общее количество образцов принятых на проверку 508, из них кисломолочных продуктов, обогащенных бифидобактериями 252 образца – это половина принятых образцов, а самое минимальное количество приходиться на сухое молоко – 4 образца. Это говорит о том, что кисломолочная продукция более подвержена инфицированию и требует тщательного контроля. Большая доля из всех продуктов – это 49,6 % составляет кисломолочные продукты, обогащенные бифидобактериями, 15,9 % - кисломолочные продукты, а мороженое составляет 12,6 % от общего количества продуктов. 0,8 % - наименьшая доля составляет сухое молоко. Из таблицы 1 видно, что кисломолочные продукты, обогащенные бифидобактериями, более часто исследуются, менее подвержено исследованию сухое молоко.

Результаты исследования молочных продуктов поступивших в лабораторию приведены ниже в таблице 2.

Таблица № 2

Количество инфицированных молочно-кислых продуктов принятых на анализ за 2013 год

Название продукта	Показатели инфицированности продукта
	КМАФАнМ, КОЕ/см3(г) (МПА)	БГКП КОЕ/мл (г) (среда Эндо)	Патогенные, в том числе Salmonella (висмут-сульфитный агар)	Staphylococcus aureus (желточно-солевой агар)	Listeria monocytogenes (казеиново-дрожжевой агар)	Дрожжи, плесени ( среда Сабуро)
Бифидумбактерин	102	-	-	-	-	-
Кефир	102	2	-	-	-	-
Творог	102	6	-	-	-	-
Мороженое	102	27	-	-	-	-

Из данных, представленных в таблице 2, из проверенных 508 образцов, инфицированными являются 39 образцов по группам КМАФАнМ и БГКП (колиформы). В 4 образцах бифидумбактерина обнаружены бактерии рода Proteus и Bacillusвходящие в группу КМАФАнМ. Остальные 35 образцов - это кефир, творог, мороженое, в которых обнаружены бактерии Escherichiacoli(БГКП) , а так же бактерии, входящие в группу КМАФАнМ.

Рис.1 Степень инфицированности кисломолочных продуктов

Известно, что бактерии рода Proteus являются грамотрицательными подвижными факультативно-анаэробными палочками, не образуют спор. Клетки прямые палочковидные, размерами 0,5x2 мкм, встречаются нитевидные формы. Хорошо растут на простых питательных средах при температуре 20–40 ⁰С, рН = 7,2 - 7,4, образуя круглые выпуклые гладкие мутные колонии. Относительно устойчивы к различным повреждающим факторам, в том числе ко многим антибиотикам.

Протеи имеют тенденцию к "роению" и быстро распространяются по поверхности плотной питательной среды. Добавление к питательной среде фенилэтилового спирта или 0,1% хлоргидрата угнетает "роение". Протеи плохо растут в кислой среде.

Протеи, как и колиформные бактерии, вызывают заболевание у людей только в тех случаях, когда они выходят за пределы своей экологической ниши (пищеварительный тракт). Их нередко обнаруживают при хронических инфекциях мочевыводящих путей, а также при пневмониях и очаговых поражениях у ослабленных больных или у больных, получающих медикаментозную терапию внутривенно. Широко распространены в воде, почве, продуктах, на объектах внешней среды, окружающих человека. Паразитируют у животных и человека, как правило, в кишечнике. Типовой вид - P. vulgaris. Род включает в себя также P. mirabilis, P. myxofaciens, P. penneri.

Присутствие протеев в том или ином объекте санитарного контроля: в воде, пищевых продуктах, смывах, является категорическим свидетельством их загрязнения продуктами разложения и указывает на развитие крайне неблагополучного санитарного состояния. Все пищевые продукты, содержащие бактерии рода Proteus, обычно выбраковывают. Питьевую воду из загрязненного этим микроорганизмом водозабора пить запрещено до специального разрешения органов Госсанэпиднадзора.

В нашей стране принято проводить обязательное исследование объектов, подлежащих санитарно-микробиологической оценке, на наличие протеев. Выявление протеев в пищевых продуктах предусмотрено ГОСТом РФ. Обнаружение этих бактерий в воде открытых водоемов и при исследовании лечебных грязей носит официальное название «протееметрия».

Род Bacillus

По современным представлениям, аэробные спорообразующие бактерии, или бациллы, объединяются в отдельный род Bacillus семейства Bacillaceae. Этот род, включающий много разнообразных видов, имеет ряд характерных особенностей и отличается от других бактериальных организмов комплексом морфолого - физиологических признаков, из которых наиболее важными являются палочковидная форма клеток, способность образовывать эндоспоры, потребность в свободном кислороде для роста.

Общая краткая характеристика объединяемых в род бацилл аэробных спорообразующих бактерий сводится к следующему.

Бациллы - свободноживущие, одноклеточные, нефотосинтезирующие, аэробные, палочковидные клетки, образующие типичные эндоспоры. Относятся к гетеротрофным организмам. Расположение клеток различное от одиночных до длинных цепочек. За исключением сибиреязвенного бацилла, бактерии этого рода подвижные. Большинство видов является грамположительными бактериями. Клетки хорошо окрашиваются обычными анилиновыми красками. Большинство видов, исключая некоторые, хорошо растут на мясопептонном агаре (МПА) при реакции среды, близкой к нейтральной. Отдельные виды развиваются в щелочной среде и требуют особых источников азота или углерода.

Bacillus cereus вызывает ряд оппортунистических инфекций (осложняющих другие заболевания) - чаще всего мастит у коров, образование абцессов, септицемию, эндокардиты, а также инфекции уха, глаз и ран.

Штаммы В. cereus выделяют два токсина - рвотный и диаррейный, вызывающие симптомы отравления.

Бациллы сибирской язвы, как правило, заболевание травоядных животных (млекопитающих), но также вызывают заболевание у человека.

Инфекция у людей встречается реже, чем инфекции у животных. Заболевание возникает у людей, при контакте с животными или продуктами животного происхождения.

Escherichia coli.

Escherichia coli - это грамотрицательные палочковидные бактерии, принадлежащие к семейству Enterobacteriaceae, роду Escherichia (эшерихия). Названы в честь открывшего их в 1885 году немецкого ученого Т. Эшериха.

E.coli является обычным обитателем кишечника многих млекопитающих, в частности, приматов, к числу которых принадлежит и человек. Поэтому ее часто называют кишечной палочкой. В организме человека E.coli выполняет полезную роль, подавляя рост вредных бактерий и синтезируя некоторые витамины.

Однако существуют разновидности бактерий E.coli, способные вызывать у человека острые кишечные заболевания. Выделяют более 150 типов патогенных (так называемых "энтеровирулентных") палочек E.coli, объединенных в четыре класса: энтеропатогенные (ЭПЭК), энтеротоксигенные (ЭТЭК), энтероинвазивные (ЭИЭК) и энтерогемморагические (ЭГЭК).

Бактерии группы кишечной палочки не устойчивы к высокой температуре, при 60°С гибель их наступает через 15 минут, при 100^°С - мгновенно. Сохраняемость кишечной палочки при низких температурах и в различных субстратах внешней среды изучена недостаточно. По некоторым данным в воде и почве кишечная палочка может сохраняться несколько месяцев.

Обычные дезинфецирующие вещества (фенол, формалин, сулема, едкий натр, креолин, хлорная известь и др.) в общепринятых разведениях быстро убивают кишечную палочку.

Выводы:

•  

  1. Молоко и молочные продукты являются нормальной средой обитания для санитарно-показательных микроорганизмов по таким параметрам как содержание доступных легко окисляющихся органических веществ, минеральных веществ, рН среды, буферность.

  2. Показано, что из общего количества исследованной молочно и молочно кислой продукции санитарно-показательная микрофлора обнаружена в 7,7% случаев, которые приходятся на бифидумбактерин, творог, кефир и мороженое.

  3. Наибольшее число случаев обнаружения санитарно показательной микрофлоры приходится на мороженое (27), наименьшее на кефир (2).

  4. Установлено, что бифидумбактерин инфицирован бациллами и протеем (10% случаев), а кефир, творог и мороженное – БГКП(90% случает).

Список литературы:

1. Акатов А.К., Зуева В.С. Стафилококки, М.: Медицина, 1983.- 256с.

2. Бакулов И.А., Котляров В.М., Шестиперова Т.И. Эпидемиологические и эпизоотологические аспекты листериоза. Журн. микробиол. 1994; 5;100-5.

3. Билетова Н.В. Санитарная микробиология / Н.В.Билетова, Р.П.Корнелаева, Л.Г.Кострикина и др./ Под ред. С.Я.Любашенко. - М.: Пищ.пр-сть, 1980. - 352 с.

4. Бренц М. Я., Козлов В. Н. Молочные продукты полезные всем / М. Я. Бренц, В. Н. Козлов // Алма-Ата Кайнар 1983174 с. 16 см

5. Дранкин Д. И., Продукты питания и инфекция- Саратов: Издательство Саратовского Университета, 1984. – 272с.

6. Карплюк И.А. Гигиена молока. - М., 2001 г.Петровский Б. В. Большая медицинская энциклопедия/ под редакцией Б.В. Петровского. - М.: Советская энциклопедия, 1980.- с. 200-205.

7. Литвин В.Ю., Емельяненко Е.Н., Пушкарева В.И. Патогенные бактерии, общие для человека и растений: проблемы и факты. Журнал микробиологии 1996; 2:101-4.

8. Мармузова Л.В. Основы микробиологии, санитарии и гигиены в пищевой промышленности. - М.: ИРПО, Академия, 2000. - 132 с.

9. Мудрецова-Висс К.А., Кудряшова А.А., Дедюхина В.П. Микробиология, санитария и гигиена: учеб.для вузов. 7-е изд. - М.: ИД «Деловая литература», 2001. - 388 с.

10. Нетрусов А. И. Микробиология: учебник для студентов высших учебных заведений / А. И. Нетрусов, И. Б. Котова. – М.: Издательский центр «Академия», 2006. – 352с.

11. Покровский, Поздеев Медицинская микробиология / Под ред. Покровского В.И., Поздеева О.К. – М.: ГЭОТАР МЕДИЦИНА, 1999. – 1200с.

12. Петровский К.С., Ванханен В.Д. Гигиена питания- М.: Медицина, 1982.- 528с.

13. Сомов Г. П., Бузолева Л. С. Адаптация патогенных бактерий к абиотическим факторам окружающей среды.- Владивосток: ОАО «Примполиграфкомбинат», 2004.

14. Тимаков В.Д., Левашев В.С. Микробиология / В.Д. Тимаков, В.С. Левашев.-М.:Медицина, 1983.- с.344-349.

15. Черкасский Б.Л. Частная эпидемиология / Б.Л. Черкасский.-М.: «Интерсэн», 2002.- с. 354-359.

16. Шленская Т. В., Журавко Е. В. Санитария и гигиена питания Учебное пособие для вузов- М.: Колосс, 2006.- 184с.

Код для цитирования: Скопировать