VI Международная студенческая научная конференция Студенческий научный форум - 2014

Целью данной работы является комплексная оценка экологического состояния родников г. Ростова-на-Дону. В экспедициях были отобраны пробы воды для оценки генотоксичности, биотоксичности и полного химического анализов, а также, для получения информации об их качестве, необходимой для рационального использования водных ресурсов и осуществления мероприятий по их охране от загрязнения.

Для выполнения поставленной цели нами предполагается решить следующие задачи:

1.       Отобрать пробы родниковой воды.

2.       Оценить степень генотоксичности родниковой воды с применением методов генетического анализа корневой меристемы проростков гороха посевного (Pisum sativum).

3.       Оценить степень биотоксичности родниковой воды по выживаемости Escherichia coli.

4.       Провести полный  химический анализ анионно- катионного состава и определить уровень тяжелых металлов родниковых вод.

5.       Выявить степень загрязнения родниковых вод г. Ростова-на-Дону.

 

В качестве точек отбора проб воды были выбраны следующие:

Точка наблюдения №1 родник «Парамоновские склады»

Расположен а улице Чехова 2. Родник бьёт из фундамента. Каптажных сооружений нет. Дебит: 5 л/с. Было отобрано 5 почвенных проб. Родник используется в рекреационных целях. Вода не пригодна для питья.

Точка наблюдения №2 родник «Первомайский»

Расположен в 200 метрах от ж/д станции «Первомайская». Родник состоит из 2 бассейнов. В малом бассейне наблюдаются водоросли. Дебит: 200 гр/с. Были отобраны две почвенные пробы. Родник используется в рекреационных целях и для набора воды. Вода не пригодна для питья.

 Точка наблюдения №3 Родник под железной дорогой Всесоюзная

Расположен под железной дорогой в 700 метрах к югу от моста Доватора через ж/д. Родник вытекает из трубы, расположенной у основания ж/д и бассейна. Дебит: 15-20 л/с. Было отобрано 3 почвенных пробы. Родник используется в рекреационных целях. Вода не пригодна для питья.

Точка наблюдения №4 родник «Гремучий»

Расположен на улице Амбулаторная 55. Состоит из двух бассейнов и 30 метрового водоотвода в сторону Дона. Дебит: 10 л/с. Было отобрано 5 почвенных проб. Родник используется в рекреационных целях и для набора воды. Вода не пригодна для питья.

Точка наблюдения №5 родник в Ботаническом саду

Расположен в Ботаническом саду, ниже главного входа. Родник представлен одним бассейном и вытекающим ручьём. Дебит: 9 л/с. Было отобрано четыре почвенные пробы. Родник используется в рекреационных целях и для набора воды. Вода не пригодна для питья.

Точка наблюдения №6 родник «Святой источник»

Расположен за женским монастырём, правый берег реки «Темерник». Родник представляет собой колодец, без каптажных сооружений. Дебит: 0.2 гр/с.   Было   отобрано   2   почвенных   пробы.   Родник   используется в рекреационных целях и для набора воды. Вода не пригодна для питья.

 

Для выявления генотоксичности использовался ана-телофазный анализ проростков корешков гороха посевного (Pisum sativum).

Ана-телофазный анализ - простой, экономичный метод, который не требует знания кариотипа и идентификации хромосом. Он позволяет выявить лишь определенные типы хромосомных аберраций, но его чувствительность вполне достаточна для заключения о присутствие генотоксикантов.

Горох проращивают в чашках Петри, положив ее на фильтровальную бумагу, пропитанную исследуемой водой или же проб земли, доведенных до гомогенного состояния, залитых дистиллированной водой, либо субстрат из мха, лишайника и др. биологических объектов. Как только корешки достигают 1 см в длину, от них отрезают кончик с зоной делений клеток длиной 0,3 см и помещают в фиксатор Кларка. Через один час фиксатор  меняется.  В фиксаторе материал хранится трое суток при 4⁰ С.

Фиксация материала, т.е. быстрое умерщвление клеток в специально подобранных растворах реактивов-фиксаторов, прерывает тот или иной процесс в клетке, вызывая необратимые изменения. При этом коллоиды протопласта переходят в нерастворимое состояние. Известно много фиксаторов, но каждый из них имеет определенное назначение. Очень важно выбрать такой фиксатор, который, убивая клетку, минимально искажает ее прижизненную структуру и отвечает целям исследования. Обычно фиксатор представляет собой смесь нескольких реактивов, каждый из которых редко используется для фиксации вследствие одностороннего действия.

В цитологических исследованиях широко применяют, особенно для изготовления давленых препаратов, «уксусный алкоголь», или фиксатор Кларка (3:1). Материал выдерживают в фиксаторе от 2 до 12 ч, а иногда и хранят в нем при температуре 0-3 °С.

Состав фиксатора Кларка: абсолютный этиловый спирт, или его 96%-й раствор, - 3 части, ледяная уксусная кислота - 1 часть.

Для приготовления препаратов хромосом клеток корневой меристемы корешки прокрашивают в течение 3 суток в  красителе, затем производят  подсчет общего числа просмотренных клеток и числа аберраций каждого класса: а) одиночный фрагмент; б) мосты; в) отставания; г) множественные нарушения.

Анализ спектра аберраций проводится с выделением хроматидных (одиночных) и хромосомных (двойных) мостов и фрагментов, трехполюсных и К-митозов, а также отставаний хромосом. При оценке отставаний учитывать хромосомы, лежащие отдельно от разошедшихся «шапок» на расстоянии, не менее чем вдвое превышающем толщину хромосомы.

Увеличение числа генетически аномальных клеток говорит о высокой мутагенной активности среды и снижении защитных свойств организма. Наиболее чувствительны к воздействию внешней среды молодые делящиеся клетки.

Цитотоксичность оценивают по изменению митотической активности клеток корневой меристемы лука. Митотический ин­декс (МИ) определяют по формуле:

,

где П - количество клеток, находящихся на стадии профазы; М - количество клеток, находящихся на стадии метафазы; А - коли­чество клеток, находящихся на стадии анафазы; Т - количество клеток, находящихся на стадии телофазы; И - неделящиеся клетки, находящиеся на стадии интерфазы.

 

Статистическая обработка результатов исследования.

Статистическую обработку результатов проводили по критерию Стьюдента.

По формуле: ,

 где p - % анафаз с аберрациями хромосом; n - общее число проанализированных анафаз.

Критерий Стьюдента: , где

M₁, M₂ - процент анафаз с аберрациями хромосом в контроле и в опыте;

m₁, m₂ - статистические ошибки.

t ≥ 1,96     p< 0,05 (*)

t ≥ 2,59     P<0,01 (**)

t ≥ 3,29     P<0,001 (***)

 

Методику определения интегральной токсичности поверхностных пресных, грунтовых, питьевых, сточных и очищенных сточных вод, водных экстрактов из объектов окружающей среды (почва, отходы производства и потребления, осадки сточных вод и др.) в лабораторных условиях проводили с использованием измерительного прибора «Биотоке-10» и тест-объекта «Эколюм». В качестве тест-объекта используется препарат лиофилизированных люминесцентных бактерий «Эколюм». Методика основана на определении изменения интенсивности биолюминесценции бактерий при воздействии химических веществ, присутствующих в анализируемой пробе, по сравнению с контролем. Уменьшение интенсивности биолюминесценции пропорционально токсическому эффекту.Острое токсическое действие исследуемой пробы на препарат «Эколюм» определяется по гашению их биолюминесценции за 30-ти минутный период экспозиции.Количественные оценки   тест-реакции выражаются в виде безразмерной   величины - индекса токсичности «Т» и функциональными токсикологическими параметрами ЕС20 и ЕС50. Индекс токсичности «Т», равный отношению Т=100(1о-1)/1о, где 1о и I соответственно интенсивность биолюминесценции контроля и опыта при фиксированном времени экспозиции исследуемой пробы с бактериями.

Токсикологические параметры пробы ЕС20 и ЕС50, определяемые также посредством измерения 1о и I, позволяют быстро и экономно выяснить вопрос, при каких объемах исходного слабо токсического образца достигается установленный предел токсичности (ЕС20 и/или ЕС50) или при каких разведениях сильно токсический образец станет безопасным (величины менее ЕС20)[11].

ЕС50 - эффективный объем образца (в опытах с чистым химическим соединением -концентрация), вызывающий тушение свечения биосенсора на 50% по сравнению с контролем. В этом случае образец сильно токсичен (индекс токсичности равен 50). ЕС20 - эффективный объем образца, (в опытах с чистым химическим соединением - концентрация) который приводит к 20%-ному тушению свечения биосенсора по сравнению с контролем. В этом случае образец токсичен (индекс токсичности равен 20). Все значения величин менее ЕС20 свидетельствуют о том, что образец безвреден для человека.

Люминометр «Биотокс-10» автоматически вычисляет величины ЕС20 и ЕС50.

Значение биологического мониторинга генотоксических соединений очень важно при системном комплексном подходе и эколого-токсикологической оценке родников. Обладая мутагенной активностью поллютанты  представляют наибольшую опасность, так как могут привести к непредсказуемым последствиям за счет увеличения частоты мутаций.

Синергическое действие загрязняющих веществ в условиях природных водоемов определяется не только химическим составом различных компонентов, но и их соотношением и взаимодействием. по суммарному действию поллютантов, присутствующих в природной воде и накапливающихся в донных отложениях, необходимо осуществлять генетический контроль за состоянием водоемов. Для этого наиболее эффективно использовать анафазный метод учета хромосомных аберраций и определение митотической активности в клетках апикальной меристемы растений.

Так как повреждения, вызванные мутагенами, отражаются в хромосомах и измерение хромосомных аберраций является приемлемым параметром для мониторинга мутагенов, то данный метод позволяет проводить прямой учет частоты хромосомных нарушений.

В пробах родниковых вод Ростова-на-Дону были выращены проростки гороха посевного (Pisum sativum) , результаты цитогенетического анализа корневой меристемы представлены в таблицах 4 и 5.

 

Таблица 4

Цитогенетические последствия в клетках корневой меристемы

 Pisum sativum после проращивания ее в загрязненной воде

Вариант	Кол-во анафаз	Из них с AXp	AXp(%)±m	МИ%
Контроль ( дист. вода)	1092	16	2,0±1,1	19,3
Парамоны	648	45	6,9±1,9***	23,4
Ст. Первомайская, пер. Краснояский	577	42	7,3±2,05***	12,0
Всесоюзная 163	388	25	6,4±2,1 ***	14,9
Гремучка №2	398	44	11,1±2,5 ***	0,8
Ботнический сад	710	24	3,4±1,6 *	11,8
Темерник в Бот. саду	386	49	12,7±2,5 ***	19,02

*  достоверные отличия по сравнению с контролем при уровне значимости p<0,05

** достоверные отличия по сравнению с контролем при уровне значимости p<0,01

*** достоверные отличия по сравнению с контролем при уровне значимости p<0,001

 

 Как видно из таблицы 1  спонтанный уровень аберраций хромосом в клетках корневой меристемы Pisum sativum находился в пределах адаптивной нормы и составил 2,0 ± 1,1%. Из  образцов родниковой воды г.Ростова-на-Дону все обладали повышенной генотоксичностью и в 1,5 - 6 раз превышали уровень спонтанного мутационного процесса, что свидетельствует о высокой степени генотоксичности данных образцов воды.

Механизмы влияния металлов на ростовые процессы растений изучены в большей степени, чем механизмы, приводящие к мута­генным эффектам. Важным механизмом, обеспечивающим воз­можность функционирования образовательных тканей в неблаго­приятных условиях, в том числе при избытке ионов металлов, является контроль клеточного цикла. У всех эукариот движение по клеточному циклу контролируется циклинзависимыми киназами (ЦЗК), которые связаны с определенными регуляторами - циклинами. На активность ЦЗК оказывают влияние внутриклеточ­ные сигналы, в том числе индуцируемые внешней средой. В роли таких сигналов могут выступать повреждения ДНК и веретена деления, изменение уровней содержания ауксина и цитокинина, окислительно-восстановительного гомеостаза и мембранного по­тенциала, величина которого непосредственно связана с ионными градиентами, в частности К⁺, Н⁺, Са²⁺. В результате этих процес­сов изменяется длительность клеточного цикла за счет задержки в контрольных точках, в основном G₁/S, G₂/M, и/или продолжи­тельности определенных фаз.

Важное значение задержки предсинтетической фазы в вы­живаемости клеток показано в исследованиях с дрожжами, на­секомыми, млекопитающими и растениями. При прорастании семян задержка предсинтетической стадии играет особую роль, поскольку клетки эмбриона синхронизированы в G₁ либо на стадии G₁ и лишь частично G₂ в зависимости от вида. При не­благоприятных условиях увеличение продолжительности пред­синтетической стадии, менее чувствительной к повреждающим ДНК воздействиям, обеспечивает возможность выживания меристематических клеток.

В зависимости от концентрации ионы металлов могут индуци­ровать повреждения ДНК и/или нитей веретена деления. В обоих случаях осуществляется задержка клеточного цикла. При этом в ответ на повреждение митотического веретена происходит подав­ление анафазы, если же повреждена ДНК, может подавляться и распад циклинов, и активность сепаразы, необходимой для на­чала разъединения сестринских хроматид. Некоторые металлы могут приводить к аномалиям митоза и удлинению по этой причине клеточного цикла не за счет непо­средственного повреждения нитей веретена деления, а в резуль­тате нарушения других процессов, обеспечивающих нормальное движение хромосом к полюсам.

Таким образом, снижение пролиферативной активности клеток образовательных тканей растений может являться следствием разных процессов: с одной стороны, находящейся под генетиче­ским контролем регуляции клеточного цикла, позволяющей со­хранять нормальное функционирование меристем при воздей­ствии металла за счет увеличения либо времени на репарацию ДНК, либо длительности стадии, во время которой ДНК менее чувствительна к внешним воздействиям; с другой стороны, на­рушения расхождения хромосом к полюсам и цитокинеза, приво­дящего к изменению плоидности клеток меристем.

Как видно из результатов обследования воды родников г. Ростова-на- Дону, митотический индекс ( таблица 4 ) во всех вариантах находится на уровне контроля. Вода из родника Гремучка (№3) показала наибольшее токсикогенное воздействия полютантов.

Анализ спектра хромосомных аберраций представлен в таблице 5, а так же на диаграммах.

Таблица 5

Относительная частота (%) распределения спектра хромосомных аберраций

Вариант	Час-тота	Кол-во норм. анафаз	-	=	Z	ZZ	=Z=	Отставание
Контроль	абс.	1000	3	3	1	1	1	3
	отн.		25%	25%	8%	8%	9%	25%
Парамоны	абс.	557	7	3	18	16	1
	отн.		15,5%	6,6%	40%	35,5%	2,2%
Ст. Первомайская, пер. Красноярский	абс.	492	12	2	11	16		1
	отн.		28,6%	4,8%	26,2%	38,1%		2,4%
Всесоюзная 163	абс.	337	12	1	6	5		2
	отн.		48%	4%	24%	20%		8%
Гремучка № 2	абс.	310	3	1	18	16
	отн.		6,8%	2,3%	40,9%	36,4%
Ботанический сад	абс.	661	3	1	10	11
	отн.		12,5%	4,2%	41,7%	45,8%
Темерник в Бот. саду	абс.	288	18	5	10	7	3
	отн.		36,7%	10,2%	20,4%	14,3%	6,1%

 

Как видно из представленных данных в меристеме гороха, пророщенного в родниковой воде  и в контрольной (дистиллированная)  спектр аббераций хромосом существенно отличается. Так в случае дистиллированной воды, мы регистрировали одиночные фрагменты(25%), множественные фрагменты(25%) и хроматидные мосты (50%). При проращивании растений на родниковой воде, спектр аберраций увеличиваются одиночные фрагменты (в некоторых случаях до 48%)и мосты(до 70%).

Анализируя спектр перестроек в других экспериментах можно выделить следующие особенности: в эксперименте с пробой воды из р. Темерник в Ботаническом саду существенно расширяется спектр аберраций хромосом, регистрируются клетки с множественными и одиночными фрагментами, хромосомными мостами, как одиночными, так и множественными, а так же мосты в совокупности с фрагментами.

Как известно хромосомные перестройки возникают после прохождения клетки в клеточном цикле фазу репликации. Хроматидные - это дорепликативные перестройки. Поэтому если в контрольных образцах мы видим в основном хроматидные перестройки, - которые возникли за 8-10 ч до фиксации, то хромосомные перестройки  могут персистировать в ряду клеточных поколениях. Такие различия в спектре хромосомных аберраций свидетельствуют  о различных механизмах их становления. 

Если ответная реакция клетки, сложной системы, на внешнее воздействие универсальна и отличается для разных организмов диапазоном доз, в котором проявляются определенные изменения биологических процессов, вызванные внешним воздействием, то действующие факторы, отличаясь своими физическими и химическими характеристиками, обладают специфичностью действия в том смысле, что могут вызывать разные первичные повреждения в клетке. Так, двунитевые разрывы ДНК считают маркерами радиационного воздействия, тогда как механизм действия многих химических соединений, связан с образованием однонитевых разрывов ДНК, а алкилирующие соединения индуцируют различные повреждения оснований. Поэтому в настоящее время все больше говорят о комплексной оценке загрязнения.

Следующим этапом исследования было определение токсичности проб родниковой воды г. Ростова-на-Дону.

Существуют различные методы оценки такого качества: гидрохимический, санитарно-гигиенический, метод биотестирования, биоиндикации и т.д. Все они направлены на определение степени токсичности раствора, т.е. его способность угнетать физиологические  процессы в живых организмах.

В последнее время предпринимаются попытки внедрения в экологию биотоксического метода, заключающегося в определении изменения интенсивности биолюминесценции генно-инженерных бактерий при воздействии токсических веществ, присутствующих в анализируемых пробах воды.

В исследованиях использовали биосенсор "Эколюм", представляющий собой лиофилизированные культуры люминесцентных бактерий Escherichia coli, содержащиеся в среде инертных газов в специальных стеклянных флаконах.

Люминесцентные бактерии содержат фермент люциферазу, осуществляющий эффективную трансформацию энергии химических связей жизненно важных метаболитов в световой сигнал на уровне, доступном для экспрессных и количественных измерений. Критерием токсического действия являлось изменение интенсивности биолюминесценции тест-объекта в исследуемой пробе по сравнению с контрольным раствором, не содержащим токсических веществ. Уменьшение интенсивности биолюминесценции всегда пропорционально токсическому эффекту.

Количественная оценка параметра тест-реакции выражается в виде индекса токсичности «Т».

Т = ,

где I₀  и  I - соответственно интенсивность контроля и опыта при фиксированном времени экспозиции (30 минут) исследуемого раствора и тест-объекта.

Методика допускает три пороговых величины индекса токсичности. (Т20 - допустимая степень токсичности, 20Т50 - образец токсичен, Т50 - образец сильно токсичен).

Анализ интегральной биотоксичности вод показал чрезвычайную токсичность образцов  воды из родника Темерник в Ботаническом саду (Т = 55%),  пробы воды из всех остальных родников являются средней степени токсичными (Т от 25 % до 37 %). Исключение составляет родниковая вода Ботанического сада ( Т= 14%), что попадает в пределы нетоксических норм и соответствует контрольным пробам. Эти данные  подтверждают выводы, сделанные на основании ана-телофазного анализа.

В водных растворах подавляющее большинство солей существует в виде ионов. В природных водах преобладают три аниона (гидрокарбонат НС0₃~, хлорид Сl^- и сульфат S0₄^2-) и четыре катиона (кальций Са²⁺, магний Mg²⁺, натрий Na⁺ и калий К⁺) - их называют главными ионами. Хлорид-ионы придают воде солёный вкус, сульфат-ионы, ионы кальция и магния - горький, гидрокарбонат-ионы безвкусны. Они составляют в пресных водах свыше 90-95 %, а в высокоминерализованных - свыше 99 % всех растворенных веществ. Обычно нижним пределом концентрации для главных ионов считают 1 мг/л, поэтому в ряде случаев, например для морских и некоторых подземных вод, к главным компонентам можно отнести также Br^-, В³⁺, Sr³⁺ и др. Отнесение ионов К⁺ к числу главных является спорным. В подземных и поверхностных водах эти ионы, как правило, занимают второстепенное положение. Только в атмосферных осадках ионы К⁺ могут играть главную роль.

Однако ионная форма главных компонентов свойственна в полной мере лишь маломинерализованным водам. При увеличении концентрации между ионами усиливается взаимодействие, направленное на ассоциацию, т.е. процесс, обратный диссоциации. При этом образуются ассоциированные ионные пары, например MgHC0₃⁺, СаНС0₃⁺.

В приложении 1 представлены результаты анионно-катионного состава воды из родников г. Ростова-на-Дону.

Как видно из таблицы наблюдается многократное превышение ПДК по основным показателям во всех пробах воды, а именно:

o  превышение содержания Na⁺ до 4 раз, в пробах воды из родника «Гремучий», «Ботанический сад», «Ст. Первлмайская», и до 3 раз «Парамоновские склады», «Темерник (Ботанический сад)»;

o  превышение содержания  Mg⁺ до 3-4 раз  «Гремучий», «Ботанический сад», «Темерник (Ботанический сад)», «Ст. Первлмайская», до 2 раз «Парамоновские склады», «Всесоюзная 163»;

o  превышение содержания  NO₃^-  в 4 раза в пробе воды из родника «Гремучий»;

o  превышение содержания  SO₄^2-  до 3 раз в роднике «Гремучий», «Ботанический сад», «Темерник (Ботанический сад)».

Воды большинства родников принадлежат к гидрокарбонатному классу. По составу катионов эта вода имеет почти исключительно преобладание кальция; гидрокарбонатные воды с преобладанием магния и натрия - крайне редкое явление. Из природных вод гидрокарбонатного класса наиболее распространены воды малой минерализации (суммарное содержание солей до 200 мг/л).

Родники с водой, относящейся к сульфатному классу, сравнительно малочисленны. Они распространены преимущественно в степной полосе и частично в полупустынях. В составе катионов природных вод сульфатного класса, так же как и в водах гидрокарбонатного класса, преобладает кальций. Однако ряд рек сульфатного класса имеет преобладание натрия. По минерализации воды сульфатного класса значительно превосходят воды гидрокарбонатного класса.

Родники, воды которых относятся к хлоридному классу, встречаются почти так же редко, как и реки, в воде которых преобладают сульфаты. К этой территории относятся преимущественно степные районы и полупустыни. Преобладающими катионами природных вод хлоридного класса являются главным образом ионы натрия. Воды хлоридного класса отличаются высокой минерализацией - свыше 1000 мг/л, реже от 500 до 1000 мг/л.

В распределении ионного состава речной воды на территории России наблюдается определенная закономерность. Имеется общая тенденция к увеличению минерализации воды на большей территории европейской части России с севера на юг и с запада на восток. Зональность ионного состава речных вод объясняется не только действием климатических условий настоящего времени, но и в значительной мере климатом прошлого. Степень выщелоченное почв и пород, наличие в них легкорастворимых солей или засоленность почв - это естественный результат многовекового воздействия соответствующих климатических условий. Нарушают зональность химического состава воды рек на территории России различия состава пород и условий их залегания.

Комплексные исследования представлены на таблице 6.

 

Таблица 6

Комплексные исследования

Место отбора проб воды	Биотоксичность(индекс токсичности - Т)	Химический состав (превышение ПДК)	Генотоксичность (кратность превышения контроля)
"Парамоновские склады"	30	↑Na+↑N03-↑S04-↑Жo6щ	3,3
"Первомайский"	37	↑Na+↑S04-↑Cl↑Жo6щ	3,5
"Всесоюзная"	25	↑Na+↑S04-↑Жo6щ	3,1
"Гремучий"	35	↑Na+↑N03 - ↑S04-↑Жo6щ	5,3
"Ботанический сад"	14	↑Na+↑N03 -↑SO4-↑Жo6щ	1,6
"Темерник в Бот. саду"	55	↑Na+↑Sr+↑S04-↑Cl-↑Жo6щ	6,1

 

Формально можно говорить о взаимоисключающих методах. Однако, не трудно заметить, что гидрохимический метод учитывает фактор минерализации растворов, оказывающий пролонгирующее негативное воздействие на физиологические функции растений (животных и человека). Биотоксический метод, напротив, не учитывает длительное отрицательное воздействие на организм. Он регистрирует лишь разовые концентрации веществ, способных вызвать токсические реакции. В связи с этим уместно поставить вопрос о совместном использовании этих двух методов при экологических исследованиях. Оценка же генотоксичности, дает комплексный ответ о воздействие полютантов, присутствующих в воде,  являющейся для многих людей питьевой. 

Таким образом, в клетках корневой меристемы гороха посевного (Pisum sativum) , пророщенного на воде из всех исследованных родников Ростова-на-Дону, наблюдается превышение уровня спонтанного мутационного процесса в 1,5 - 6 раз. Наиболее мутагенными оказались воды родника Гремучка и р. Темерника в районе Ботанического сада.

Анализ интегральной биотоксичности родниковых вод с применением лиофилизированной культуры люминесцентных бактерий Escherichia coli, показал чрезвычайную токсичность образцов  воды из родника Темерник в Ботаническом саду (Т = 55%),  пробы воды из всех остальных родников являются средней степени токсичными (Т от 25 % до 37 %). Исключение составляет родниковая вода Ботанического сада ( Т= 14%), что попадает в пределы нетоксических норм и соответствует контрольным пробам.

Результаты анионно-катионного состава воды из всех исследуемых  родников г. Ростова-на-Дону  демонстрирует многократное превышение ПДК по основным показателям ↑Na⁺↑Sr⁺↑S0₄^-↑Cl-↑⁺N0₃ ^- ↑ Ж_o6щ.

Комплексная оценка родниковой воды гю Ростова-на-Дону объективно демонстрирует значительный экологический вред и доказывает необходимость проведения цитогенетического мониторинга всех источников питьевого водоснабжения мегаполиса.

Код для цитирования: Скопировать