При исследовании вещественных доказательств в судебно-медицинской практике значительный интерес представляет решение вопроса о давности формирования следов крови, особенно в тех случаях, когда следы крови сформированы в различные периоды: до смерти жертвы и после ее наступления. Несмотря на очевидную важность этой проблемы, на современном этапе в практике судебно-медицинских экспертов есть только один довольно простой метод установления давности образования пятен крови, разработанный Вайнигом в 1954 году. Этот метод базируется на установлении давности образования следов крови с учетом степени выхода из пятна ионов хлора, которые постепенно диффундируют в предмет-носитель с образованием вокруг следа своеобразной каймы хлоридов. Ионы хлора при химической обработке нитратом серебра можно перевести в хлорид серебра, следы которого после промывки и восстановления различаются в виде черной каймы вокруг пятна крови. По ширине этой каймы можно сделать вывод о давности формирования следа крови. Но надо заметить, что достоверно неизвестно, будет ли совпадать динамика диффузии ионов хлора в зависимости от давности образования следа крови живого человека и крови, вытекшей из мертвого тела. Теоретически можно предположить, что кровь, которая покинула поврежденные сосуды живого человека, в связи с процессом коагуляции и ретракции, в отличие от трупной крови, имеет несколько отличные физические свойства по диффузии в предмет-носитель. Повлияет ли это на динамику формирования каймы хлоридов вокруг пятна?
Известно, что в крови хлор встречается в основном в виде хлористого натрия, содержание которого колеблется от 0,56 до 0,6 % по отношению к весу тела (560- 600мг%). В эритроцитах находится главным образом калиевая соль соляной кислоты, а в плазме - кальциевая и натриевая.
При исследовании морфологии крови скоропостижно умерших был сделан вывод, что кровь живого человека (донорская) и трупная кровь (фибринолизная) идентичны. По данным Е.Г. Цуриновой содержание хлоридов в цельной фибринолизной крови - 575мг%. При изучении морфологического состава постагональной крови были сделаны следующие выводы. В крови, изъятой в ближайшие 2-7 часов после смерти, наблюдается четко выраженная тенденция к сгущению крови: увеличены количество гемоглобина, а также число эритроцитов и лейкоцитов, что может быть обусловлено выходом из сосудистого русла жидкостной части крови. Изменения электролитного состава в фибринолизной и постагональной крови идентичны и выражаются главным образом в значительной ее гиперкалиемии. Каждый час пребывания крови в сосудистом русле трупа меняет ее электролитный состав за счет прогрессирующей гиперкалиемии. Содержание хлоридов в постагональний крови колеблется в пределах от 501 до 670мг%, что в среднем составляет 584мг%. Причина смерти, продолжительность агонии, сроки изъятия крови существенного влияния на количество хлоридов в крови не оказывают. Аналогичные данные были получены и при исследовании фибринолизной крови. Таким образом, данные литературы свидетельствуют, что содержание хлоридов относительно постоянно, и это указывает на стабильность гомеостазирования этого показателя внутренней среды даже при длительных терминальных состояниях. Целью исследования было изучение и сравнение степени выхода хлоридов из пятен, образованных донорской и фибринолизной кровью. Материал и методы исследования. Эксперимент был выполнен на 2 образцах текстильных тканей (хлопчатобумажной ткани и натуральном шелке) и 1 образце бумаги с пятнами крови живого человека и пятнами фибринолизной крови, которые хранились в комнатных условиях при относительной влажности воздуха 65-75% и температуре 20-22ºС. Для выявления хлоридов вырезки ткани и бумаги с исследуемыми пятнами помещали в реактив, состоящий из 5 мл 10 % раствора нитрата натрия, 1 мл концентрированной азотной кислоты и 50 мл 1% раствора нитрата серебра. После обработки указанными реактивами вырезки промывали дистиллированной водой, подкисленной азотной кислотой, для удаления нитрата серебра, не вступившего в реакцию с хлоридами. Затем вырезки размещали в реактиве, который состоял из 1 части 35% раствора формальдегида и 10 частей 2% раствора едкой щелочи, после чего промывали в дистиллированной воде и высушивали на фильтровальной бумаге. Далее участок пятна возвращали на место, откуда он был вырезан, и определяли, насколько отличаются границы обнаруженной картины распространения хлоридов от границ соседних участков пятна. Результаты исследования и их обсуждение. В результате исследования пятен крови живого человека установлено, что через сутки кайма хлоридов появляется впервые вокруг пятна крови на газетной бумаге. Через неделю отмечалось устойчивое увеличение ширины каймы до 2,5-2,8 мм, через две недели ширина каймы составляла 3,9-4,1 мм, достигая к концу третьего месяца 4,3-4,5 мм (табл. 1). Подобная динамика роста ширины каймы наблюдалась и на газетной бумаге с пятнами фибринолизной крови.Таблица 1.
Показатели дистанцирования каймы хлоридов донорской и фибринолизной крови на поверхности предметов-носителей
Предметы-носители |
Сроки произведения замеров |
|||||||
7 суток |
14 суток |
60 суток |
90 суток |
|||||
КД n=30 |
КФ n=30 |
КД n=30 |
КФ n=30 |
КД n=30 |
Ф n=30 |
КД n=30 |
КФ n=30 |
|
Хлопчатобумажная ткань, n=240 |
0,37 ±0,04 |
0,31 ±0,04 |
0,91 ±0,03 |
0,84 ±0,03 |
1,12 ±0,04 |
1,08 ±0,03 |
1,67 ±0,07 |
1,75 ±0,06 |
Шелковая ткань, n=240 |
0,25 ±0,05 |
0,31 ±0,05 |
0,65 ±0,04 |
0,59 ±0,02 |
0,91 ±0,03 |
0,86 ±0,03 |
1,23 ±0,06 |
1,11 ±0,03 |
Бумага газетная без печати, n=240 |
2,65 ±0,04 |
2,58 ±0,03 |
4,00 ±0,04 |
3,92 ±0,03 |
4,25 ±0,05 |
4,22 ±0,05 |
4,44 ±0,04 |
4,52 ±0,03 |
Примечание: n – количество соответствующих предметов-носителей |