В связи с этим огромное значение при исследовании состояния растений имеет изучение пластичности фотосинтетического аппарата, его способности приспосабливаться к изменяющимся внешним условиям. Одним из биохимических показателей реакции растений на изменение факторов внешней среды, степени их адаптации к новым экологическим условиям является содержание хлорофиллов и каротиноидов. Поскольку соотношение хлорофиллы a+b/каротиноиды обычно в норме стабильно и быстро реагирует на экстремальные факторы среды, то одним из маркеров химической загрязненности лаборатории может служить пигментный состав листьев травянистых растений.
Цель работы заключалась в изучении воздействия условий химической лаборатории на содержание фотосинтезирующих пигментов в комнатных растениях на примере «Золотого уса» (Callisia fragrans), распространенного и широко используемого как в народной, так и официальной медицине.
Отбирались образцы растительного сырья, растущего в условиях химической лаборатории Оренбургской государственной медицинской академии и в домашних условиях.
Метод: отбор ассимиляционных органов (стебель и листья) производили в середине дня, когда содержание пигментов в растениях наибольшее. Исследуемые растения взвешивали (0,1г), измельчали, тщательно растирали, переносили в пробирку, заливали 10 мл 96-% этилового спирта и помещали в темное место, так как исследуемые пигменты разрушаются на свету. Через 12 часов проводили измерения содержания пигментов спектрофотометрическим методом при длине волны 649 нм, 665 нм, 440,5 нм. Содержание хлорофиллов a и b, каротиноидов рассчитывали с использованием следующих формул:
а) определение концентрации (мг/л) пигментов:
Схлорофилл a= 13,7*D665 – 5,76* D649
Схлорофилл b= 25,8*D649 – 7,6* D665
Скаротиноидов = 4,695*D440,5 – 0,268* (Схлорофилл a+ Схлорофилл b)
б) определение количества пигментов в растение (мг/г сырой массы):
А= (V*C)/(Р*1000), где V - объем спиртовой вытяжки; С - концентрация пигментов в спиртовой вытяжке (мг/л); Р – навеска исследуемого материала.
В результате проведенных исследований были получены следующие результаты:
Хлорофилл а (мг/л) |
Хлорофилл b (мг/л) |
Каротиноиды (мг/л) |
а + в |
а/в |
(а+в)/карот. |
||
Растение, растущее в лабораторных условиях |
Стебель |
0,395 |
0,437 |
0,165 |
0,832 |
0,903 |
5,042 |
Листья |
3,244 |
1,599 |
0,820 |
4,843 |
2,028 |
5,906 |
|
Растение, растущее в домашних условиях |
Стебель |
0,852 |
0,680 |
0,456 |
1,532 |
1,252 |
3,359 |
Листья |
2,756 |
1,417 |
0,791 |
4,173 |
1,944 |
5,275 |
В результате проведенных исследований было выявлено значительное увеличение суммы хлорофилла а и хлорофилла b, а также соотношения суммы хлорофиллов к количеству каротиноидов в листьях растения, выращенного в химической лаборатории по сравнению с растением, произрастающим в домашних условиях . Это можно объяснить тем, что влияние лабораторных условий отрицательно сказывается на фотосинтезе растения , в результате чего оно адаптируется к меняющимся факторам среды, для поддержания своей жизнедеятельности. В стебле лабораторного растения наблюдается меньшее количество хлорофиллов а и b, а также каротиноидов, чем в стебле из лаборатории, что объясняется тем, что условия лаборатории не оказывают значительное влияние на клетки стеблей, и не играют роль главного фактора адаптации.
Таким образом, установлено существенное влияние химической загрязненности лаборатории на уровень хлорофиллов и каротиноидов в листьях растения, что может служить критерием оценки адаптации растения к экологическим условиям.